| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 缩略词表 | 第10-15页 |
| 第1章 绪论 | 第15-28页 |
| 1.1 引言 | 第15-16页 |
| 1.2 脂质体 | 第16-21页 |
| 1.2.1 脂质体的组成 | 第17-18页 |
| 1.2.2 脂质体制备方法 | 第18-21页 |
| 1.3 超声微泡造影剂 | 第21-26页 |
| 1.3.1 超声微泡造影剂的分类 | 第21-22页 |
| 1.3.2 超声微泡造影剂的制备方式 | 第22-23页 |
| 1.3.3 超声微泡造影剂的发展 | 第23-26页 |
| 1.4. 本论文的目的与意义 | 第26-28页 |
| 第2章 携抗PSMA载多西紫杉醇脂质体微泡的制备表征 | 第28-43页 |
| 2.1 前言 | 第28-29页 |
| 2.2 实验样品及仪器 | 第29-30页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第29-30页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第30页 |
| 2.3. 实验部分 | 第30-32页 |
| 2.3.1 DPPE-PEG-APP合成 | 第30-31页 |
| 2.3.2 靶向脂质体微泡的制备 | 第31页 |
| 2.3.3 靶向DLMBs制备参数优化(正交实验) | 第31-32页 |
| 2.4 靶向DLMBs的测试与表征 | 第32-34页 |
| 2.4.1 靶向DLMBs形貌考察 | 第32页 |
| 2.4.2 靶向DLMBs包封率及载药率的测定 | 第32-34页 |
| 2.4.3 靶向DLMBs稳定性研究 | 第34页 |
| 2.4.4 靶向DLMBs联合超声体外药物释放研究 | 第34页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第34-41页 |
| 2.5.1 合成方法及路线 | 第34-35页 |
| 2.5.2 DPPE-PEG-APP的HNMR表征 | 第35页 |
| 2.5.3 靶向DLMBs形貌考察 | 第35-36页 |
| 2.5.4 DTX体外分析方法的建立 | 第36-38页 |
| 2.5.5 包封率确定载药微泡制备参数的优化结果分析 | 第38-40页 |
| 2.5.6 靶向DLMBs稳定性评价 | 第40页 |
| 2.5.7 靶向DLMBs联合超声体外药物释放分析 | 第40-41页 |
| 2.6 结论 | 第41-43页 |
| 第3章 靶向DLMBs联合超声的体外抗肿瘤效率的研究 | 第43-56页 |
| 3.1 前言 | 第43页 |
| 3.2 实验试剂及仪器 | 第43-45页 |
| 3.2.1 细胞株 | 第43页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第43-44页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第44-45页 |
| 3.3 实验方法 | 第45-48页 |
| 3.3.1 细胞复苏,培养和传代 | 第45页 |
| 3.3.2 细胞粘附实验 | 第45页 |
| 3.3.3 细胞荧光实验 | 第45-46页 |
| 3.3.4 细胞毒性实验 | 第46-47页 |
| 3.3.5 靶向DLMBs细胞摄取实验 | 第47-48页 |
| 3.4 实验结果分析 | 第48-54页 |
| 3.4.1 细胞靶向实验分析 | 第48-49页 |
| 3.4.2 细胞荧光实验分析 | 第49页 |
| 3.4.3 细胞毒性实验分析 | 第49-53页 |
| 3.4.4 靶向DLMBs细胞摄取评价 | 第53-54页 |
| 3.5 小结 | 第54-56页 |
| 第4章 靶向DLMBs联合超声的体内抗肿瘤效率的研究 | 第56-65页 |
| 4.1 前言 | 第56页 |
| 4.2 实验试剂及仪器 | 第56-57页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第56-57页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第57页 |
| 4.3 实验方法 | 第57-59页 |
| 4.3.1 靶向DLMBs联合超声体内治疗前列腺癌的效果 | 第57-58页 |
| 4.3.2 抗肿瘤作用机制的评价 | 第58页 |
| 4.3.3 靶向DLMBs对裸鼠生存影响 | 第58-59页 |
| 4.4 统计方法 | 第59页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第59-63页 |
| 4.5.1 靶向DLMBs联合超声的治疗效果 | 第59-60页 |
| 4.5.2 载药微泡的作用机制 | 第60-61页 |
| 4.5.3 多功能微泡的生物相容性评价 | 第61-63页 |
| 4.6 小结 | 第63-65页 |
| 全文总结 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-78页 |
| 攻读学位期间发表和待发表的论文 | 第78页 |
