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山茱萸和灯台树药用活性成分及其合成关键酶基因的研究

摘要第3-5页
Abstract第5-7页
英文缩写词表第12-13页
第1章 文献综述第13-23页
    1.1 山茱萸属药用植物研究概述第13-14页
        1.1.1 山茱萸属植物研究概况第13页
        1.1.2 山茱萸研究概况第13-14页
        1.1.3 灯台树研究概况第14页
    1.2 山茱萸药用活性成分研究概述第14-18页
        1.2.1 药用活性成分萜类化合物的分类第14-15页
        1.2.2 药用活性成分环烯醚萜的药理作用第15-16页
        1.2.3 马钱苷合成途径的研究进展第16-17页
        1.2.4 马钱苷合成途径中的关键酶基因第17-18页
    1.3 药用植物转录组研究概述第18-20页
        1.3.1 转录组及其研究方法第18-19页
        1.3.2 高通量测序技术的应用第19-20页
    1.4 本研究的目的和意义第20-23页
第2章 山茱萸和灯台树生长期果实特性的比较研究第23-31页
    2.1 前言第23页
    2.2 实验材料与仪器第23页
        2.2.1 实验材料第23页
        2.2.2 实验仪器第23页
    2.3 实验方法第23-24页
    2.4 结果与分析第24-29页
        2.4.1 山茱萸和灯台树果实形态比较第24-25页
        2.4.2 山茱萸和灯台树果实大小统计分析第25-27页
        2.4.3 山茱萸和灯台树果实百粒重第27页
        2.4.4 山茱萸和灯台树果皮的含水率第27-28页
        2.4.5 山茱萸和灯台树果实的出皮率第28-29页
    2.5 讨论第29-31页
第3章 山茱萸和灯台树中活性成分含量的测定第31-45页
    3.1 前言第31页
    3.2 实验材料第31-32页
    3.3 实验方法第32-39页
        3.3.1 总糖含量的测定第32-34页
        3.3.2 总有机酸含量的测定第34页
        3.3.3 总环烯醚萜苷含量的测定第34-36页
        3.3.4 马钱苷含量的测定第36-39页
    3.4 结果与分析第39-44页
        3.4.1 总糖含量第39-40页
        3.4.2 总有机酸含量第40-41页
        3.4.3 总环烯醚萜苷含量第41-43页
        3.4.4 马钱苷含量第43-44页
    3.5 讨论第44-45页
第4章 山茱萸果实转录组测序和关键基因挖掘第45-65页
    4.1 前言第45页
    4.2 实验材料第45-46页
        4.2.1 实验材料第45页
        4.2.2 实验设备第45-46页
        4.2.3 实验试剂第46页
    4.3 实验方法第46-48页
        4.3.1 山茱萸果实RNA提取第46-47页
        4.3.2 山茱萸果实总RNA质量鉴定第47页
        4.3.3 cDNA文库构建第47页
        4.3.4 Illumina测序和短读序组装第47-48页
        4.3.5 功能注释第48页
        4.3.6 SSR检测第48页
    4.4 结果与分析第48-62页
        4.4.1 山茱萸总RNA提取结果第48-49页
        4.4.2 山茱萸转录组序列拼接和质量评估第49-52页
        4.4.3 山茱萸转录组的功能注释与功能分类第52-53页
        4.4.4 山茱萸转录组的代谢途径分析第53-58页
        4.4.5 山茱萸转录组SSR分析第58-59页
        4.4.6 山茱萸活性成分代谢途径及相关基因的研究第59-61页
        4.4.7 山茱萸转录组数据中转录因子研究第61-62页
    4.5 讨论第62-65页
        4.5.1 山茱萸转录组测序与功能注释第63页
        4.5.2 山茱萸中代谢通路与相关基因的挖掘第63页
        4.5.3 山茱萸转录组中SSR分布第63-65页
第5章 山茱萸和灯台树马钱苷合成途径关键酶基因克隆及表达分析第65-81页
    5.1 前言第65页
    5.2 实验材料第65-66页
        5.2.1 实验材料第65页
        5.2.2 实验设备第65-66页
        5.2.3 实验试剂第66页
    5.3 实验方法第66-71页
        5.3.1 引物设计第66页
        5.3.2 总RNA的提取第66页
        5.3.3 总RNA质量检测第66-67页
        5.3.4 cDNA第一链的合成第67-68页
        5.3.5 普通PCR扩增反应第68页
        5.3.6 PCR产物的胶回收和纯化第68页
        5.3.7 目的片段加A尾第68-69页
        5.3.8 T载体的连接第69页
        5.3.9 连接产物的转化第69-70页
        5.3.10 菌液PCR扩增第70页
        5.3.11 Real-time PCR第70-71页
    5.4 结果与分析第71-79页
        5.4.1 总RNA的提取结果第71-72页
        5.4.2 基因克隆结果第72-75页
        5.4.3 Real-time PCR溶解曲线和扩增曲线第75-77页
        5.4.4 山茱萸和灯台树G10H和SLS基因的表达分析第77-79页
    5.5 讨论第79-81页
        5.5.1 山茱萸和灯台树G10H基因的表达量与马钱苷含量间的关系第79-80页
        5.5.2 山茱萸和灯台树SLS基因的表达量与马钱苷含量间的关系第80-81页
结论第81-83页
参考文献第83-95页
致谢第95-97页
攻读硕士学位期间研究成果第97页

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