| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 缩略表 | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-15页 |
| 1 结肠癌及其发病机理介绍 | 第10-11页 |
| 2 视黄酸(retinoic acid，RA)及其受体介绍 | 第11-12页 |
| 3 视黄酸在结肠癌中的生物学意义 | 第12页 |
| 4 蛋白质组学的几种研究方法简介 | 第12-14页 |
| 5 研究目的及意义 | 第14-15页 |
| 第二章 全反式视黄酸对结肠癌细胞的体外作用研究 | 第15-24页 |
| 1. 前言 | 第15页 |
| 2. 材料和方法 | 第15-18页 |
| ·材料、试剂和仪器 | 第15-16页 |
| ·细胞株 | 第15页 |
| ·主要试剂 | 第15页 |
| ·主要仪器 | 第15-16页 |
| ·实验方法 | 第16-18页 |
| ·细胞培养和药物制备 | 第16页 |
| ·HCT-15 细胞在ATRA 作用下的MTT 试验 | 第16页 |
| ·HCT-15 细胞生长曲线测定 | 第16-17页 |
| ·光学显微镜观察ATRA 作用下HCT-15 细胞的生长形态 | 第17页 |
| ·AO/EB 染色检测HCT-15 细胞凋亡情况 | 第17页 |
| ·DNA ladder 检测ATRA 作用下HCT-15 细胞凋亡情况 | 第17页 |
| ·HCT-15 细胞的碱性磷酸酶活性测定 | 第17-18页 |
| 3. 结果 | 第18-22页 |
| ·ATRA 对HCT-15 细胞的增殖抑制作用 | 第18-19页 |
| ·HCT-15 细胞生长曲线测定 | 第19-20页 |
| ·光学显微镜观察ATRA 作用下HCT-15 细胞的生长情况 | 第20页 |
| ·AO/EB 染色检测结肠癌细胞HCT-15 的凋亡情况 | 第20-21页 |
| ·DNA ladder 检测ATRA 作用下HCT-15 细胞凋亡情况 | 第21-22页 |
| ·结肠癌细胞分化指标的碱性磷酸酶活性测定 | 第22页 |
| 4. 讨论 | 第22-24页 |
| 第三章 ATRA 处理前后结肠癌细胞 HCT-15 的蛋白质组学分析 | 第24-36页 |
| 1. 前言 | 第24页 |
| 2. 材料和方法 | 第24-29页 |
| ·材料、试剂和仪器 | 第24-27页 |
| ·主要试剂 | 第24-25页 |
| ·主要溶液配制 | 第25-26页 |
| ·主要材料 | 第26页 |
| ·主要仪器 | 第26页 |
| ·分析软件 | 第26-27页 |
| ·实验方法 | 第27-29页 |
| ·样品制备 | 第27页 |
| ·第一向等电聚焦(IEF) | 第27页 |
| ·IPG 胶条的平衡 | 第27页 |
| ·IPG 胶条的转移和第二向SDS-PAGE | 第27-28页 |
| ·银染及图像分析 | 第28页 |
| ·胶内酶解 | 第28页 |
| ·MALDI-TOF-TOF 质谱鉴定和数据库搜索 | 第28-29页 |
| ·免疫印迹(Western Blot) | 第29页 |
| 3. 结果 | 第29-34页 |
| ·双向电泳结果 | 第29-33页 |
| ·ATRA 作用前后HCT-15 细胞的双向电泳图谱 | 第29-31页 |
| ·差异蛋白点的质谱鉴定结果 | 第31-33页 |
| ·免疫印迹实验结果 | 第33-34页 |
| 4. 讨论 | 第34-36页 |
| 第四章结论和展望 | 第36-37页 |
| 1. 结论 | 第36页 |
| 2. 展望 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-42页 |
| 致谢 | 第42页 |
