| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 英文词表 | 第13-14页 |
| 第1章 文献综述 | 第14-21页 |
| 1.1 激活素 | 第14-15页 |
| 1.1.1 激活素的分子结构特征 | 第14-15页 |
| 1.1.2 激活素的信号传导 | 第15页 |
| 1.2 激活素结合蛋白 | 第15-16页 |
| 1.3 激活素与神经发育的关系 | 第16-17页 |
| 1.4 神经递质 | 第17-19页 |
| 1.4.1 5-羟色胺 | 第17页 |
| 1.4.2 去甲肾上腺素 | 第17-18页 |
| 1.4.3 多巴胺 | 第18页 |
| 1.4.4 乙酰胆碱 | 第18页 |
| 1.4.5 谷氨酸 | 第18-19页 |
| 1.4.6 γ-氨基丁酸 | 第19页 |
| 1.5 本课题研究目的和特色 | 第19-21页 |
| 1.5.1 研究目的 | 第19-20页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第20页 |
| 1.5.3 本课题的研究特色 | 第20-21页 |
| 第2章 材料与方法 | 第21-29页 |
| 2.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.2 主要实验试剂 | 第21页 |
| 2.3 主要试剂及配置方法 | 第21-22页 |
| 2.3.1 1xPBS 的配制： | 第21页 |
| 2.3.2 胰蛋白酶消化液的配制 | 第21-22页 |
| 2.3.3 1%甲苯胺蓝染液的配制 | 第22页 |
| 2.3.4 4%多聚甲醛的配制 | 第22页 |
| 2.4 实验仪器 | 第22-23页 |
| 2.5 实验方法 | 第23-28页 |
| 2.5.1 培养板的准备 | 第23页 |
| 2.5.2 鸡胚 DRG 的分离与培养 | 第23页 |
| 2.5.3 RT-PCR | 第23-25页 |
| 2.5.4 病理组织切片制作及染色 | 第25-26页 |
| 2.5.5 鸡胚 DRG 单细胞制备与培养 | 第26-27页 |
| 2.5.6 甲苯胺蓝染色 | 第27页 |
| 2.5.7 ELISA 法检测鸡胚 DRG 单细胞培养上清神经递质水平 | 第27-28页 |
| 2.5.8 RT-PCR 检测 DRG 单细胞激活素及其受体 mRNA 表达水平 | 第28页 |
| 2.6 统计学分析 | 第28-29页 |
| 第3章 实验结果 | 第29-41页 |
| 3.1 激活素 A 对鸡胚背根神经节神经突起生长的影响 | 第29-31页 |
| 3.1.1 Activin A 促进鸡胚 DRG 神经突起生长 | 第29-30页 |
| 3.1.2 Activin A 不依赖内源性 NGF 促进鸡胚 DRG 神经突起生长 | 第30-31页 |
| 3.2 激活素 A 及其受体表达与鸡胚背根神经节发育的相关性 | 第31-36页 |
| 3.2.1 Activin A 及其受体、FS 及 Smad2/3 mRNA 表达与 DRG 发育 | 第31-32页 |
| 3.2.2 Activin A 及其受体、FS 蛋白在鸡胚 DRG 的表达 | 第32-34页 |
| 3.2.3 ActRⅡA 型受体在 DRG 神经元的表达 | 第34-36页 |
| 3.3 激活素 A 作用于鸡胚背根神经节的可能机制 | 第36-41页 |
| 3.3.1 Activin A 及 NGF 对神经胶质细胞生长的影响 | 第36-38页 |
| 3.3.2 Activin A 对培养 DRG 单细胞神经递质释放的影响 | 第38-40页 |
| 3.3.3 Activin A 对 DRG 细胞 NGF 及 NGFR mRNA 表达的影响 | 第40-41页 |
| 第4章 讨论 | 第41-46页 |
| 4.1 激活素 A 对鸡胚背根神经节神经突起生长的影响 | 第41-43页 |
| 4.2 激活素 A 及其受体表达与鸡胚背根神经节发育的相关性 | 第43-44页 |
| 4.3 激活素 A 作用于鸡胚背根神经节的可能机制 | 第44-46页 |
| 第5章 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54页 |
