| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 前言 | 第8-12页 |
| 材料与方法 | 第12-18页 |
| 1. 耗材与试剂 | 第12-13页 |
| 1.1 主要仪器与耗材 | 第12页 |
| 1.2 主要试剂 | 第12-13页 |
| 2. 实验动物 | 第13页 |
| 3. 细胞株 | 第13页 |
| 4. 实验方法 | 第13-18页 |
| 4.1 动物准备及处理 | 第13-14页 |
| 4.2 急性缺血性肾损伤大鼠模型的构建 | 第14页 |
| 4.3 肾脏组织病理改变的观察 | 第14-15页 |
| 4.4 大鼠血清肌酐、尿素氮的检测 | 第15-16页 |
| 4.5 细胞培养及传代 | 第16页 |
| 4.6 细胞冻存及复苏 | 第16页 |
| 4.7 体外人肾小管上皮细胞氧化应激模型构建 | 第16-17页 |
| 4.8 MDA及SOD检测 | 第17页 |
| 4.9 免疫印迹 | 第17页 |
| 4.10 统计学处理 | 第17-18页 |
| 结果 | 第18-26页 |
| 1.Ren可以改善急性缺血性肾损伤大鼠的肾功能 | 第18页 |
| 2.Ren可以减轻急性缺血性肾损伤大鼠的肾脏受损程度 | 第18-20页 |
| 3.Ren可以减轻急性缺血性肾损伤大鼠肾组织氧化应激及炎症反应 | 第20-21页 |
| 4.Ren可以上调急性缺血性肾损伤大鼠肾脏局部Nrf2及相关蛋白表达 | 第21-23页 |
| 5.细胞实验中，Ren可降低hRPTEC细胞内MDA水平并增加SOD水平 | 第23页 |
| 6.细胞实验中，Ren可促进hRPTEC细胞Nrf2、HO-1、NQO-1 蛋白表达 | 第23-26页 |
| 讨论 | 第26-29页 |
| 结论 | 第29-30页 |
| 文献综述 | 第30-43页 |
| 参考文献 | 第37-43页 |
| 攻读期间发表论文情况 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 个人简历 | 第45页 |
