摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
引言 | 第9-17页 |
实验材料 | 第17-23页 |
1. 本课题所涉及的试剂与耗材 | 第17-19页 |
2. 蛋白免疫印迹实验所涉及的分子量标准和试剂盒 | 第19页 |
3. 本课题所需的朊病毒毒株以及朊病毒感染的细胞模型 | 第19页 |
4. 主要所需的仪器和设备 | 第19-20页 |
5. 本课题实验中常用到的缓冲液和相关溶液的配置 | 第20-23页 |
实验方法 | 第23-36页 |
1. 仓鼠及小鼠脑组织的采集 | 第23页 |
2. 仓鼠及小鼠脑组织匀浆的制备 | 第23-24页 |
3. 通过Western blot的方法来检测脑组织及细胞模型中蛋白的含量 | 第24-26页 |
4. 细胞培养 | 第26-27页 |
5. 制备细胞裂解液的方法 | 第27-28页 |
6. 测定脑匀浆及细胞中蛋白质的浓度 | 第28页 |
7. 免疫共沉淀试验 | 第28-29页 |
8. 免疫组织化学试验 | 第29-32页 |
9. 仓鼠及小鼠脑组织免疫组织荧光染色 | 第32-34页 |
10. 细胞免疫荧光染色 | 第34-35页 |
11. 统计学分析 | 第35-36页 |
实验结果 | 第36-51页 |
1. 朊病毒感染终末期啮齿动物脑组织中α1-ACT表达、分布情况 | 第36-39页 |
2. 朊病毒感染啮齿动物脑组织中α1-ACT动态变化情况 | 第39-40页 |
3. 朊病毒感染仓鼠脑组织中α1-ACT与星形胶质细胞、小胶质细胞和受损神经元存在共定位 | 第40-44页 |
4. 朊病毒感染仓鼠脑组织中α1-ACT与PrP~(Sc)沉积的相关性 | 第44-46页 |
5. 朊病毒感染仓鼠脑组织中α1-ACT与PrP的分子间相互作用 | 第46-48页 |
6. 朊病毒感染细胞模型中α1-ACT的表达情况 | 第48-51页 |
讨论 | 第51-54页 |
小结 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-62页 |
综述 | 第62-76页 |
参考文献 | 第70-76页 |
个人简历 | 第76-77页 |
致谢 | 第77-78页 |