| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 目录 | 第11-15页 |
| 插图与附表清单 | 第15-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-31页 |
| 1.1 引言 | 第17-18页 |
| 1.2 异喹啉类生物碱概述 | 第18-19页 |
| 1.3 样品前处理技术研究进展 | 第19-26页 |
| 1.3.1 液液萃取 | 第20页 |
| 1.3.2 固相萃取 | 第20-21页 |
| 1.3.3 固相微萃取 | 第21页 |
| 1.3.4 分散液液微萃取 | 第21-22页 |
| 1.3.5 悬浮固化液相微萃取 | 第22-25页 |
| 1.3.6 双水相萃取 | 第25-26页 |
| 1.3.7 其他技术 | 第26页 |
| 1.4 离子液体在萃取分析中的研究进展 | 第26-29页 |
| 1.4.1 离子液体简介 | 第26-27页 |
| 1.4.2 离子液体在萃取分析中的应用 | 第27-29页 |
| 1.5 论文研究意义、内容和创新点 | 第29-31页 |
| 1.5.1 研究意义 | 第29-30页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第30页 |
| 1.5.3 创新点 | 第30-31页 |
| 第二章 温度控制离子液体分散液液微萃取(TCIL-DLLME)-高效液相色谱法检测尿液中的异喹啉生物碱 | 第31-42页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 实验部分 | 第31-33页 |
| 2.2.1 主要试剂及仪器 | 第31-32页 |
| 2.2.1.1 主要试剂 | 第31-32页 |
| 2.2.1.2 主要仪器 | 第32页 |
| 2.2.2 溶液的配制 | 第32页 |
| 2.2.3 色谱条件 | 第32-33页 |
| 2.2.4 TCIL-DLLME萃取过程 | 第33页 |
| 2.2.5 尿液样品前处理 | 第33页 |
| 2.2.6 萃取率及富集倍数的计算 | 第33页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第33-41页 |
| 2.3.1 TCIL-DLLME萃取条件优化 | 第33-38页 |
| 2.3.1.1 萃取剂种类的影响 | 第33-34页 |
| 2.3.1.2 萃取剂体积的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.1.3 温度的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.1.4 萃取时间的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.1.5 离心时间的影响 | 第37页 |
| 2.3.1.6 pH的影响 | 第37-38页 |
| 2.3.2 方法的线性范围、精密度及检测限 | 第38页 |
| 2.3.3 实际样品应用 | 第38-41页 |
| 2.4 小结 | 第41-42页 |
| 第三章 涡旋辅助表面活性剂增强乳化-凝固漂浮有机液滴液液微萃取(VSLLME-SFO)-高效液相色谱法检测血液中的异喹啉生物碱 | 第42-53页 |
| 3.1 引言 | 第42-43页 |
| 3.2 实验部分 | 第43-45页 |
| 3.2.1 主要试剂及仪器 | 第43-44页 |
| 3.2.1.1 主要试剂 | 第43页 |
| 3.2.1.2 主要仪器 | 第43-44页 |
| 3.2.2 溶液的配制 | 第44页 |
| 3.2.3 色谱条件 | 第44页 |
| 3.2.4 VSLLME-SFO萃取过程 | 第44-45页 |
| 3.2.5 血液样品前处理 | 第45页 |
| 3.2.6 萃取率及富集倍数的计算 | 第45页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第45-52页 |
| 3.3.1 VSLLME-SFO萃取条件优化 | 第45-50页 |
| 3.3.1.1 萃取剂种类的影响 | 第46页 |
| 3.3.1.2 萃取剂体积的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.1.3 表面活性剂的类型和浓度的影响 | 第47-48页 |
| 3.3.1.4 涡旋时间的影响 | 第48-49页 |
| 3.3.1.5 pH的影响 | 第49页 |
| 3.3.1.6 离子强度的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.2 方法的线性范围、精密度及检测限 | 第50页 |
| 3.3.3 实际样品应用 | 第50-52页 |
| 3.4 小结 | 第52-53页 |
| 第四章 亲水性离子液体/盐双水相体系(ILATPS)-高效液相色谱法检测尿液中的异喹啉生物碱 | 第53-65页 |
| 4.1 引言 | 第53页 |
| 4.2 实验部分 | 第53-56页 |
| 4.2.1 主要试剂及仪器 | 第53-54页 |
| 4.2.1.1 主要试剂 | 第53-54页 |
| 4.2.1.2 主要仪器 | 第54页 |
| 4.2.2 溶液的配制 | 第54-55页 |
| 4.2.3 色谱条件 | 第55页 |
| 4.2.4 ILATPS萃取过程 | 第55页 |
| 4.2.5 尿液样品前处理 | 第55页 |
| 4.2.6 萃取率、富集倍数及相比的计算 | 第55-56页 |
| 4.2.7 响应面实验设计 | 第56页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第56-64页 |
| 4.3.1 ILAPTS萃取条件优化 | 第56-61页 |
| 4.3.1.1 双水相体系的确立 | 第56-57页 |
| 4.3.1.2 盐用量的影响 | 第57-58页 |
| 4.3.1.3 pH的影响 | 第58-59页 |
| 4.3.1.4 响应面优化 | 第59-61页 |
| 4.3.2 方法的线性范围、精密度及检测限 | 第61-62页 |
| 4.3.3 实际样品应用 | 第62-64页 |
| 4.4 小结 | 第64-65页 |
| 第五章 结论 | 第65-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-83页 |
| 附录A 攻读硕士期间发表论文目录 | 第83页 |
