| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-34页 |
| 1 IAA的合成 | 第15-21页 |
| 1.1 植物病原菌IAA合成途径 | 第15-16页 |
| 1.2 植物IAA合成的色氨酸依赖途径 | 第16-20页 |
| 1.3 植物IAA合成的非色氨酸依赖途径 | 第20-21页 |
| 2 IAA的运输 | 第21-26页 |
| 2.1 生长素运输的化学渗透假说 | 第22页 |
| 2.2 生长素的极性运输 | 第22-24页 |
| 2.3 生长素的非极性运输 | 第24-26页 |
| 2.4 生长素对其自身运输的反馈 | 第26页 |
| 3 IAA的信号 | 第26-29页 |
| 3.1 生长素受体 | 第26-27页 |
| 3.2 生长素信号转导机制 | 第27-29页 |
| 4 | 第29-30页 |
| 4.2 水稻花药开裂机理 | 第29页 |
| 4.3 水稻花粉萌发与双受精机理 | 第29-30页 |
| 5 水稻种间杂种不育基因的研究进展 | 第30-33页 |
| 6 本研究的目的和意义 | 第33-34页 |
| 第二章 水稻aid2突变体的形态和细胞学观察 | 第34-46页 |
| 摘要 | 第34-35页 |
| 1 材料与方法 | 第35-37页 |
| 1.1 试验材料及田间种植 | 第35页 |
| 1.2 碘一碘化钾染色观察花粉育性 | 第35页 |
| 1.3 DAPI染色观察花粉育性 | 第35-36页 |
| 1.4 花粉离体培养测定花粉萌发率 | 第36页 |
| 1.5 花粉在柱头上的萌发情况观察 | 第36页 |
| 1.6 花药发育的半薄切片观察 | 第36-37页 |
| 1.7 花粉扫描和透射电镜观察 | 第37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-43页 |
| 2.1 突变体的主要表型特点 | 第37-38页 |
| 2.2 花药发育过程的半薄组织切片观察 | 第38-40页 |
| 2.3 花粉形态和育性观察 | 第40-42页 |
| 2.4 花粉体内萌发观察 | 第42-43页 |
| 3 讨论 | 第43-46页 |
| 3.1 自花授粉作物的双受精 | 第43页 |
| 3.2 花药开裂相关基因的克隆 | 第43-45页 |
| 3.3 花药不开裂是引起水稻杂种不育的原因之一 | 第45-46页 |
| 第三章 水稻AID2基因的精细定位与克隆 | 第46-66页 |
| 摘要 | 第46-47页 |
| 1 材料与方法 | 第47-52页 |
| 1.1 材料及种植 | 第47页 |
| 1.2 DNA样品制备 | 第47-48页 |
| 1.3 分子标记检测 | 第48-49页 |
| 1.4 新标记的开发 | 第49页 |
| 1.5 目标区域基因预测及序列测定 | 第49页 |
| 1.6 基因组互补载体的构建 | 第49-50页 |
| 1.7 RNA干扰载体的构建 | 第50页 |
| 1.8 农杆菌介导的水稻遗传转化 | 第50页 |
| 1.9 转基因植株PCR鉴定 | 第50-51页 |
| 1.10 基因启动子分析 | 第51页 |
| 1.11 基因的组织表达分析 | 第51-52页 |
| 1.12 生长素含量测定 | 第52页 |
| 2 结果与分析 | 第52-62页 |
| 2.1 AID2基因的遗传分析 | 第52页 |
| 2.2 AID2基因的初定位 | 第52-53页 |
| 2.3 AID2基因的精细定位和候选基因的测序确认 | 第53-54页 |
| 2.4 基因组互补转基因植株的PCR检测及表型分析 | 第54-55页 |
| 2.5 RNAi转基因植株的PCR检测及表型分析 | 第55-57页 |
| 2.6 表达模式分析 | 第57-58页 |
| 2.7 激素处理和生长素测定 | 第58-60页 |
| 2.8 花药和浆片含糖量、浆片渗透压测定 | 第60页 |
| 2.9 ~(14)C-蔗糖运输实验 | 第60-61页 |
| 2.10 花药蛋白Western-Blot分析 | 第61-62页 |
| 3 讨论 | 第62-66页 |
| 3.1 AID2基因参与植物生长素动态平衡 | 第62-63页 |
| 3.2 AID2基因参与调解水稻开花、花药开裂和花粉萌发 | 第63-64页 |
| 3.3 生长素与同化物的运输有关 | 第64-66页 |
| 第四章 栽培稻种间杂种花粉不育基因S19的精细定位 | 第66-80页 |
| 摘要 | 第66-67页 |
| 1 材料与方法 | 第67-69页 |
| 1.1 材料种植 | 第67-68页 |
| 1.2 花粉育性观察 | 第68-69页 |
| 1.3 细胞学观察 | 第69页 |
| 1.4 DNA提取及PCR分析 | 第69页 |
| 1.5 分子标记的发展 | 第69页 |
| 2 结果与分析 | 第69-77页 |
| 2.1 亲本及F_1花粉、小穗育性和F_2群体中花粉育性分布 | 第69-70页 |
| 2.2 S19在水稻种间杂种不育中的遗传效应 | 第70-71页 |
| 2.3 亲本及F_1花粉发育的细胞学特征 | 第71-73页 |
| 2.4 S19的精细定位 | 第73-76页 |
| 2.5 S19定位区间的基因预测 | 第76-77页 |
| 3 讨论 | 第77-80页 |
| 3.1 非洲栽培稻对现代育种的价值 | 第77页 |
| 3.2 偏分离与水稻杂种不育的关系 | 第77-78页 |
| 3.3 S19引起的杂种不育细胞学及遗传特征 | 第78-80页 |
| 第五章 全文总结 | 第80-84页 |
| 1 全文结论 | 第80-81页 |
| 1.1 aid2是一个以花药不开裂为主的雄性功能缺失型突变体 | 第80页 |
| 1.2 AID2基因调控生长素的动态平衡 | 第80-81页 |
| 1.4 生长素和植物同化物从源到库的运输相关 | 第81页 |
| 1.5 栽培稻种间杂种花粉不育基因的精细定位 | 第81页 |
| 2 本研究创新之处 | 第81-84页 |
| 参考文献 | 第84-104页 |
| 附录 | 第104-114页 |
| 在读期间发表的论文 | 第114-116页 |
| 致谢 | 第116页 |
