| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 研究现状、成果 | 第15-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-18页 |
| 对象和方法 | 第18-36页 |
| 1.1 实验动物及饲料 | 第18页 |
| 1.2 实验动物饲养 | 第18页 |
| 1.3 主要试剂和仪器 | 第18-20页 |
| 1.3.1 主要试剂 | 第18-19页 |
| 1.3.2 主要仪器 | 第19-20页 |
| 1.4 实验方法 | 第20-34页 |
| 1.4.1 相关试剂的配制和准备 | 第20页 |
| 1.4.2 DM动物模型的建立、分组 | 第20-21页 |
| 1.4.3 给药方法 | 第21-22页 |
| 1.4.4 标本采集 | 第22页 |
| 1.4.5 一般指标及检测 | 第22-23页 |
| 1.4.6 ELISA法检测大鼠血清ICAM-1 和IL-6 水平 | 第23-24页 |
| 1.4.7 qPCR法检测大鼠肾脏JAK2、STAT3、SOCS1、ICAM-1 和IL-6 mRNA表达 | 第24-28页 |
| 1.4.8 Western Blotting法检测大鼠肾脏p-JAK2、p-STAT3、SOCS1、ICAM-1和IL-6 表达 | 第28-32页 |
| 1.4.9 免疫组化法检测大鼠肾脏ICAM-1 和IL-6 蛋白表达 | 第32-34页 |
| 1.5 统计学方法 | 第34-36页 |
| 结果 | 第36-60页 |
| 2.1 大鼠一般情况 | 第36页 |
| 2.2 大鼠造模前空腹静脉血糖、血脂及胰岛β 细胞功能情况 | 第36-37页 |
| 2.3 实验大鼠成模情况 | 第37页 |
| 2.4 大鼠体重、外周血、尿生化变化 | 第37-44页 |
| 2.4.1 体重变化 | 第37-38页 |
| 2.4.2 血糖变化 | 第38页 |
| 2.4.3 肾重指数（KW/ BW）变化 | 第38-39页 |
| 2.4.4 24小时尿微量白蛋白（UMA）变化 | 第39页 |
| 2.4.5 血脂变化 | 第39-40页 |
| 2.4.6 肝功能变化 | 第40-41页 |
| 2.4.7 肾功能变化 | 第41-42页 |
| 2.4.8 血常规变化 | 第42-44页 |
| 2.5 ELISA法检测各组SD大鼠血清ICAM-1 和IL-6 水平 | 第44-46页 |
| 2.6 qPCR法检测SD大鼠肾脏JAK2、STAT3、SOCS1、ICAM-1 和IL-6 mRNA相对表达量 | 第46-52页 |
| 2.6.1 qPCR扩增产物基因的扩增曲线及溶解曲线 | 第46-47页 |
| 2.6.2 qPCR法检测SD大鼠肾脏JAK2、STAT3、SOCS1、ICAM-1 和IL-6mRNA水平 | 第47-52页 |
| 2.7 Western Blotting法检测SD大鼠肾脏p-JAK2、p-STAT3、SOCS1、ICAM-1和IL-6 水平 | 第52-58页 |
| 2.7.1 不同剂量TWP干预后SD大鼠肾脏p-JAK2、p-STAT3、SOCS1、ICAM-1和IL-6 蛋白表达 | 第52-55页 |
| 2.7.2 不同剂量TWP+BBR干预后SD大鼠肾脏p-JAK2、p-STAT3、SOCS1、ICAM-1 和IL-6 蛋白表达 | 第55-58页 |
| 2.8 免疫组化法观察大鼠肾脏ICAM-1 和IL-6 蛋白的定位及半定量分析 | 第58-60页 |
| 2.8.1 免疫组化法观察大鼠肾脏I C A M - 1 和I L - 6 蛋白表达定位 | 第58页 |
| 2.8.2 免疫组化法对大鼠肾脏ICAM-1 和IL-6 蛋白表达半定量分析 | 第58-60页 |
| 讨论 | 第60-66页 |
| 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-72页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第72-73页 |
| 附录 | 第73-74页 |
| 综述 炎症与糖尿病肾病研究进展 | 第74-83页 |
| 综述参考文献 | 第78-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 个人简历 | 第84页 |
