| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 前言 | 第15-16页 |
| 第1章 文献综述 | 第16-23页 |
| 1.1 桦褐孔菌研究进展 | 第16-18页 |
| 1.1.1 桦褐孔菌的生态学研究 | 第16-17页 |
| 1.1.2 桦褐孔菌的化学成分 | 第17-18页 |
| 1.1.3 桦褐孔菌的药理作用 | 第18页 |
| 1.2 桦褐孔菌多糖研究进展 | 第18-22页 |
| 1.2.1 桦揭孔菌多糖的提取方法 | 第18-19页 |
| 1.2.2 桦褐孔菌多糖的分离纯化方法 | 第19页 |
| 1.2.3 桦褐孔菌多糖结构的分析方法 | 第19-21页 |
| 1.2.4 桦褐孔菌多糖的药理作用 | 第21-22页 |
| 1.3 小结与展望 | 第22-23页 |
| 第2章 桦褐孔菌多糖的提取 | 第23-35页 |
| 2.1 仪器与材料 | 第23-24页 |
| 2.1.1 仪器 | 第23页 |
| 2.1.2 试剂 | 第23页 |
| 2.1.3 材料 | 第23-24页 |
| 2.2 方法 | 第24-28页 |
| 2.2.1 桦褐孔菌多糖的提取 | 第24页 |
| 2.2.2 桦褐孔菌多糖提取工艺优化 | 第24-26页 |
| 2.2.3 桦褐孔菌多糖的含量测定 | 第26-27页 |
| 2.2.4 蛋白含量测定 | 第27-28页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第28-34页 |
| 2.3.1 原料预处理对桦褐孔菌多糖提取率的影响 | 第28页 |
| 2.3.2 单因素试验结果 | 第28-29页 |
| 2.3.3 响应面试验结果 | 第29-33页 |
| 2.3.4 桦褐孔菌多糖的含量测定结果 | 第33页 |
| 2.3.5 蛋白含量测定结果 | 第33-34页 |
| 2.3.6 讨论 | 第34页 |
| 2.4 小结 | 第34-35页 |
| 第3章 桦褐孔菌多糖的纯化与分离 | 第35-44页 |
| 3.1 仪器与材料 | 第35-36页 |
| 3.1.1 仪器 | 第35页 |
| 3.1.2 试剂 | 第35页 |
| 3.1.3 材料 | 第35-36页 |
| 3.2 方法 | 第36-38页 |
| 3.2.1 桦褐孔菌多糖的纯化 | 第36页 |
| 3.2.2 桦褐孔菌多糖的分离 | 第36-37页 |
| 3.2.3 桦褐孔菌多糖的纯度及分子量测定 | 第37页 |
| 3.2.4 桦褐孔菌均一多糖单糖组成分析 | 第37-38页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第38-43页 |
| 3.3.1 桦褐孔菌多糖的纯化 | 第38页 |
| 3.3.2 桦褐孔菌多糖的分离 | 第38-39页 |
| 3.3.3 桦褐孔菌多糖的分子量测定结果 | 第39-41页 |
| 3.3.4 桦褐孔菌均一多糖单糖组成分析结果 | 第41-43页 |
| 3.3.5 讨论 | 第43页 |
| 3.4 小结 | 第43-44页 |
| 第4章 桦褐孔菌多糖降糖成分筛选 | 第44-53页 |
| 4.1 仪器与材料 | 第44-45页 |
| 4.1.1 仪器 | 第44页 |
| 4.1.2 试剂 | 第44页 |
| 4.1.3 材料 | 第44-45页 |
| 4.2 方法 | 第45-47页 |
| 4.2.1 HepG2细胞的体外培养 | 第45页 |
| 4.2.2 不同浓度IOP对HepG2细胞葡萄糖消耗的作用 | 第45-46页 |
| 4.2.3 不同浓度IOP对HepG2细胞的抑制作用 | 第46页 |
| 4.2.4 HepG2细胞胰岛素抵抗模型的建立 | 第46页 |
| 4.2.5 IOP对HepG2细胞胰岛素抵抗的影响 | 第46页 |
| 4.2.6 统计学处理 | 第46-47页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第47-51页 |
| 4.3.1 不同浓度IOP对HepG2细胞葡萄糖消耗的影响 | 第47-48页 |
| 4.3.2 不同浓度IOP对HepG2细胞的抑制作用 | 第48-49页 |
| 4.3.3 最佳胰岛素浓度和胰岛素抵抗时间的确定 | 第49-50页 |
| 4.3.4 5 种均一多糖对HepG2细胞胰岛素抵抗的影响 | 第50-51页 |
| 4.3.5 讨论 | 第51页 |
| 4.4 小结 | 第51-53页 |
| 第5章 桦褐孔菌多糖的结构鉴定 | 第53-61页 |
| 5.1 仪器与材料 | 第53-54页 |
| 5.1.1 仪器 | 第53页 |
| 5.1.2 试剂 | 第53-54页 |
| 5.1.3 材料 | 第54页 |
| 5.2 方法 | 第54-57页 |
| 5.2.1 高碘酸氧化和Simth降解 | 第54-55页 |
| 5.2.2 甲基化分析 | 第55-57页 |
| 5.2.3 桦褐孔菌均一多糖红外光谱测定 | 第57页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第57-60页 |
| 5.3.1 高碘酸氧化和Simth降解结果 | 第57-58页 |
| 5.3.2 甲基化分析结果 | 第58-59页 |
| 5.3.3 桦褐孔菌均一多糖红外光谱分析结果 | 第59-60页 |
| 5.3.4 讨论 | 第60页 |
| 5.4 小结 | 第60-61页 |
| 第6章 桦褐孔菌多糖的抗氧化活性的研究 | 第61-66页 |
| 6.1 仪器与材料 | 第61-62页 |
| 6.1.1 仪器 | 第61-62页 |
| 6.1.2 试剂 | 第62页 |
| 6.1.3 材料 | 第62页 |
| 6.2 方法 | 第62-63页 |
| 6.2.1 对超氧阴离子自由基的清除作用 | 第62-63页 |
| 6.2.2 对羟基自由基的清除作用 | 第63页 |
| 6.2.3 DPPH自由基清除作用 | 第63页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第63-65页 |
| 6.3.1 对超氧阴离子自由基的清除作用结果 | 第63-64页 |
| 6.3.2 对羟基自由基的清除作用 | 第64-65页 |
| 6.3.3 DPPH清除试验结果 | 第65页 |
| 6.3.4 讨论 | 第65页 |
| 6.4 小结 | 第65-66页 |
| 第7章 桦褐孔菌多糖的体外抑菌作用研究 | 第66-70页 |
| 7.1 仪器与材料 | 第66页 |
| 7.1.1 仪器 | 第66页 |
| 7.1.2 试剂 | 第66页 |
| 7.1.3 材料 | 第66页 |
| 7.2 实验方法 | 第66-68页 |
| 7.2.1 培养基的制备 | 第66-67页 |
| 7.2.2 供试菌悬液的制备 | 第67页 |
| 7.2.3 药敏纸片的制备 | 第67页 |
| 7.2.4 体外抑菌活性测定 | 第67页 |
| 7.2.5 抑菌率的测定 | 第67页 |
| 7.2.6 最低抑菌浓度值（MIC）的测定 | 第67页 |
| 7.2.7 最低杀菌浓度值（MBC）的测定 | 第67-68页 |
| 7.3 结果与讨论 | 第68-69页 |
| 7.3.1 抑菌率测定结果 | 第68页 |
| 7.3.2 最低抑菌浓度值（MIC）测定结果 | 第68-69页 |
| 7.3.3 最低杀菌浓度值（MBC）测定结果 | 第69页 |
| 7.3.4 讨论 | 第69页 |
| 7.4 小结 | 第69-70页 |
| 第8章 桦褐孔菌多糖对免疫功能调节作用的研究 | 第70-76页 |
| 8.1 仪器与材料 | 第70-71页 |
| 8.1.1 仪器 | 第70页 |
| 8.1.2 试剂 | 第70页 |
| 8.1.3 材料 | 第70-71页 |
| 8.2 实验方法 | 第71-72页 |
| 8.2.1 实验动物 | 第71页 |
| 8.2.2 试剂配制方法 | 第71页 |
| 8.2.3 常规制备脾淋巴细胞 | 第71页 |
| 8.2.4 桦褐孔菌多糖对小鼠脾细胞体外增殖影响 | 第71-72页 |
| 8.2.5 统计学处理 | 第72页 |
| 8.3 结果与讨论 | 第72-74页 |
| 8.3.1 桦褐孔菌多糖对小鼠脾细胞体外增殖影响结果 | 第72-74页 |
| 8.3.2 讨论 | 第74页 |
| 8.4 小结 | 第74-76页 |
| 结论 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 英文缩写 | 第84-86页 |
| 附图 | 第86-87页 |
| 攻读学位期间取得的学术成果 | 第87页 |
