中文摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
英汉缩略词对照表 | 第11-13页 |
前言 | 第13-15页 |
1 材料与方法 | 第15-18页 |
1.1 实验对象 | 第15页 |
1.2 主要实验仪器和试剂 | 第15-17页 |
1.2.1 主要仪器设备 | 第15-16页 |
1.2.2 主要试剂和耗材 | 第16-17页 |
1.3 主要试剂的配制 | 第17-18页 |
1.3.1 小鼠致敏和激发溶液OVA的配制 | 第17页 |
1.3.2 ANP雾化吸入溶液的配制 | 第17页 |
1.3.3 支气管肺泡灌洗液(BALF)的配制 | 第17页 |
1.3.4 PBS溶液的配制 | 第17-18页 |
1.3.5 封闭液的配制 | 第18页 |
2.实验方法 | 第18-27页 |
2.1 支气管哮喘模型小鼠的建立 | 第18-19页 |
2.2 小鼠肺组织病理学检测及病理学分析 | 第19-21页 |
2.3 小鼠支气管肺泡灌洗液(BALF)的搜集 | 第21页 |
2.4 ELISA测定正常组和哮喘组小鼠支气管肺泡灌洗液中的ANP因子的量 | 第21-22页 |
2.5 ELISA测定4组小鼠支气管肺泡灌洗液中的IL-4 因子的含量 | 第22-23页 |
2.6 ELISA法测定4组小鼠支气管肺泡灌洗液(BALF)中IFN-γ因子的含量 | 第23页 |
2.7 4组小鼠肺组织转录因子T-Bet和GATA-3 的免疫组织化学染色 | 第23-25页 |
2.8 Western-blot(WB)法,检测4组小鼠肺组织特异性转录因子NPRA、T-Bet及GATA-3 蛋白变化趋势 | 第25-27页 |
2.8.1 蛋白提取 | 第25页 |
2.8.2 蛋白定量 | 第25-26页 |
2.8.3 凝胶、电泳及转膜 | 第26-27页 |
2.8.4 加一抗、二抗及显色曝光后并分析 | 第27页 |
2.8.5 条带分析 | 第27页 |
3 统计分析 | 第27-28页 |
4 结果 | 第28-41页 |
4.1 小鼠造模后行为学变化 | 第28页 |
4.2 小鼠肺组织病理学 | 第28-32页 |
4.3 正常组和哮喘组小鼠支气管肺泡灌洗液BALF上清液中ANP水平的测定 | 第32-33页 |
4.4 4组小鼠支气管肺泡灌洗液BALF上清液Il-4 水平的测定 | 第33-34页 |
4.5 4组小鼠支气管肺泡灌洗液BALF上清液IFN-γ因子水平的测定 | 第34-36页 |
4.6 4组小鼠肺组织T- Bet和G ATA - 3 蛋白的免疫组织化学染色 | 第36-39页 |
4.7 Western-blot(WB)法检测各组小鼠肺组织特异性转录因子NPRA、T-Bet及GATA-3 蛋白变化趋势 | 第39-41页 |
5 讨论 | 第41-43页 |
6 结论 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-47页 |
综述 | 第47-54页 |
参考文献 | 第52-54页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第54-55页 |
致谢 | 第55页 |