| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩写词表 | 第8-12页 |
| 第1章 绪论 | 第12-22页 |
| 1.1 植物耐低温胁迫机理的研究进展 | 第12-16页 |
| 1.1.1 低温冷害 | 第12页 |
| 1.1.2 植物低温胁迫的应答机制 | 第12-16页 |
| 1.2 植物C2H2型锌指蛋白的研究进展 | 第16-20页 |
| 1.2.1 植物C2H2型锌指蛋白的结构特征 | 第16-17页 |
| 1.2.2 植物C2H2型锌指蛋白的功能 | 第17-20页 |
| 1.3 合成型转录因子 | 第20页 |
| 1.4 立题意义与依据 | 第20-22页 |
| 第2章 水稻OsZFP151基因的生物信息学分析 | 第22-25页 |
| 2.1 试验方法 | 第22页 |
| 2.2 结果与分析 | 第22-24页 |
| 2.3 讨论 | 第24-25页 |
| 第3章 OsZFP151蛋白亚细胞定位 | 第25-30页 |
| 3.1 试验材料 | 第25页 |
| 3.1.1 材料和培养方法 | 第25页 |
| 3.1.2 主要试剂、菌株和溶液配置方法 | 第25页 |
| 3.2 试验方法 | 第25-28页 |
| 3.2.1 重组载体pENSG-N-GFP-OsZFP151的构建 | 第25-27页 |
| 3.2.2 拟南芥原生质体制备及转化 | 第27-28页 |
| 3.3 结果与分析 | 第28页 |
| 3.4 讨论 | 第28-30页 |
| 第4章 OsZFP151基因在低温胁迫下的功能分析 | 第30-45页 |
| 4.1 试验材料 | 第30-31页 |
| 4.1.1 材料 | 第30-31页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第31页 |
| 4.2 试验方法 | 第31-33页 |
| 4.2.1 OsZFP151转基因材料的分子检测 | 第31页 |
| 4.2.2 OsZFP151基因和与冷胁迫相关的Marker基因的表达分析 | 第31-32页 |
| 4.2.3 耐冷性表型分析 | 第32-33页 |
| 4.2.4 OsZFP151转基因水稻生理指标的测定 | 第33页 |
| 4.3 结果与分析 | 第33-42页 |
| 4.3.1 OsZFP151转基因材料的分子检测 | 第33-36页 |
| 4.3.2 OsZFP151基因在水稻不同组织中的转录表达分析 | 第36-37页 |
| 4.3.3 OsZFP151转基因水稻的耐冷性表型分析 | 第37-39页 |
| 4.3.4 水稻OsZFP151基因在低温胁迫下的表达分析 | 第39页 |
| 4.3.5 OsZFP151基因调控与低温胁迫相关Marker基因表达分析 | 第39-40页 |
| 4.3.6 低温胁迫下OsZFP151转基因材料的生理生化指标分析 | 第40-42页 |
| 4.4 讨论 | 第42-45页 |
| 第5章 OsZFP151互作蛋白的筛选与验证 | 第45-54页 |
| 5.1 试验材料 | 第45页 |
| 5.1.1 材料和主要试剂 | 第45页 |
| 5.1.2 溶液的配置 | 第45页 |
| 5.2 试验方法 | 第45-49页 |
| 5.2.1 重组诱饵载体的构建 | 第45-46页 |
| 5.2.2 Y2HGold酵母感受态细胞的制备与转化 | 第46页 |
| 5.2.3 酵母自激活的验证 | 第46-47页 |
| 5.2.4 利用酵母双杂交系统筛选水稻cDNA文库 | 第47页 |
| 5.2.5 X-gal显色分析 | 第47页 |
| 5.2.6 酵母双杂交试验 | 第47-48页 |
| 5.2.7 CPRG液体显色试验 | 第48页 |
| 5.2.8 双分子荧光互补（B FC）试验 | 第48-49页 |
| 5.3 结果与分析 | 第49-52页 |
| 5.3.1 重组诱饵载体的自激活验证 | 第49-50页 |
| 5.3.2 利用酵母双杂交系统筛库的结果 | 第50页 |
| 5.3.3 酵母双杂交试验结果分析 | 第50-51页 |
| 5.3.4 CPRG液体显色试验结果分析 | 第51页 |
| 5.3.5 BiFC试验结果分析 | 第51-52页 |
| 5.4 讨论 | 第52-54页 |
| 第6章 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 作者简介 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
