| 中文摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 序言 | 第10-14页 |
| 1.1 多囊卵巢综合征概述 | 第10页 |
| 1.2 PCOS的诊断标准 | 第10-11页 |
| 1.3 PCOS研究领域的热点与难点 | 第11-13页 |
| 1.3.1 瘦素抵抗 | 第11-12页 |
| 1.3.2 治疗方法 | 第12页 |
| 1.3.3 疾病预防 | 第12页 |
| 1.3.4 PCOS动物模型 | 第12-13页 |
| 1.4 本研究的主要目的与内容 | 第13-14页 |
| 第二章 运动干预对大鼠多囊卵巢综合征的影响 | 第14-28页 |
| 2.1 引言 | 第14页 |
| 2.2 实验材料 | 第14-15页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第14页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第14-15页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第15页 |
| 2.3 实验方法 | 第15-18页 |
| 2.3.1 实验设计 | 第15页 |
| 2.3.2 样本量的确定 | 第15-16页 |
| 2.3.3 实验步骤 | 第16-18页 |
| 2.3.4 统计学分析 | 第18页 |
| 2.4 实验结果 | 第18-25页 |
| 2.4.1 大鼠血清性激素水平比较 | 第18-19页 |
| 2.4.2 大鼠动情周期变化 | 第19-21页 |
| 2.4.3 大鼠卵巢形态和组织学变化 | 第21-23页 |
| 2.4.4 大鼠体重变化 | 第23-24页 |
| 2.4.5 大鼠血脂、空腹胰岛素和瘦素水平比较 | 第24-25页 |
| 2.5 讨论 | 第25-28页 |
| 2.5.1 PCOS大鼠模型评价 | 第25页 |
| 2.5.2 运动干预对大鼠多囊卵巢综合征的影响 | 第25-28页 |
| 第三章 运动预防大鼠多囊卵巢综合征的机制 | 第28-51页 |
| 3.1 引言 | 第28-29页 |
| 3.2 实验材料 | 第29-31页 |
| 3.2.1 实验样品 | 第29页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第29-30页 |
| 3.2.3 主要仪器 | 第30-31页 |
| 3.3 实验方法 | 第31-41页 |
| 3.3.1 实时荧光定量PCR (Real-time PCR) | 第31-34页 |
| 3.3.2 蛋白免疫印迹 (Western Blot) | 第34-39页 |
| 3.3.3 免疫组化 (Immunocytochemistry) | 第39-40页 |
| 3.3.4 统计学分析 | 第40-41页 |
| 3.4 实验结果 | 第41-47页 |
| 3.4.1 leptin、OB-Rb、SOCS3 mRNA在大鼠卵巢中的表达 | 第41-42页 |
| 3.4.2 OB-Rb、SOCS3蛋白在大鼠卵巢中的表达 | 第42-43页 |
| 3.4.3 OB-Rb、SOCS3蛋白在大鼠卵巢中的定位表达 | 第43-47页 |
| 3.5 讨论 | 第47-51页 |
| 3.5.1 大鼠PCOS发病的可能原因 | 第47-48页 |
| 3.5.2 运动干预对大鼠卵巢中leptin、OB-Rb基因表达的影响 | 第48-50页 |
| 3.5.3 运动干预对大鼠卵巢中SOCS3基因表达的影响 | 第50-51页 |
| 第四章 结论 | 第51-53页 |
| 4.1 运动干预对大鼠PCOS的影响和作用机制 | 第51-52页 |
| 4.2 全文总结 | 第52页 |
| 4.3 研究的局限与不足 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-61页 |
| 攻读硕士学位期间的学术成果 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
