中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
缩略语/符号说明 | 第13-14页 |
前言 | 第14-16页 |
研究现状、成果 | 第14-15页 |
研究目的、方法 | 第15-16页 |
对象和方法 | 第16-26页 |
1.1 仪器及设备 | 第16页 |
1.2 实验试剂 | 第16-17页 |
1.3 实验方法 | 第17-25页 |
1.3.1 细胞分组 | 第17页 |
1.3.2 细胞复苏与培养 | 第17页 |
1.3.3 MTT检测细胞生长曲线 | 第17-18页 |
1.3.4 Transwell迁移及侵袭实验 | 第18页 |
1.3.5 小鼠前列腺癌移植瘤模型的建立 | 第18页 |
1.3.6 小鼠前列腺癌的治疗 | 第18-19页 |
1.3.7 小鼠标本的采集 | 第19页 |
1.3.8 流式细胞术检测CD4~+、CD8~+T细胞、MDSCs比例 | 第19-20页 |
1.3.8.1 脾脏淋巴细胞悬液的制备 | 第19页 |
1.3.8.2 骨髓淋巴细胞悬液的制备 | 第19-20页 |
1.3.8.3 流式细胞检测术步骤 | 第20页 |
1.3.9 非放射性细胞毒性试验(LDH杀伤试验) | 第20-21页 |
1.3.10 肿瘤组织切片免疫组织化学染色 | 第21-22页 |
1.3.11 蛋白质免疫印迹(Western Blot) | 第22-23页 |
1.3.11.1 蛋白的提取 | 第22-23页 |
1.3.11.2 具体步骤 | 第23页 |
1.3.12 ELISA法检测小鼠外周血清中TGF-β及IL 10 含量 | 第23-25页 |
1.3.12.1 试剂的配置 | 第23-24页 |
1.3.12.2 操作步骤 | 第24-25页 |
1.4 统计学方法 | 第25-26页 |
结果 | 第26-55页 |
2.1 冷冻消融联合TGF-β单抗阻断对RM-1 细胞功能的影响 | 第26-28页 |
2.1.1 RM-1 细胞上清TGF-β浓度变化 | 第26页 |
2.1.2 MTT检测不同治疗对RM-1 细胞增殖的影响 | 第26页 |
2.1.3 不同治疗对RM-1 细胞迁移、侵袭能力影响 | 第26-28页 |
2.2 冷冻消融联合TGF-β单抗阻断对RM-1 荷瘤小鼠的影响 | 第28-36页 |
2.2.1 不同治疗后各组小鼠外周血TGF-β水平变化 | 第28-29页 |
2.2.2 不同治疗后各组小鼠外周血IL-10 含量变化 | 第29-31页 |
2.2.3 不同治疗方法对小鼠瘤生长的影响 | 第31-33页 |
2.2.4 不同治疗后肺转移率及肺转移数量的变化情况 | 第33-36页 |
2.3 冷冻消融联合TGF-β单抗阻断对RM-1 荷瘤小鼠免疫微环境的影响 | 第36-55页 |
2.3.1 不同治疗后各组小鼠骨髓MDSCs细胞变化情况 | 第36-38页 |
2.3.2 不同治疗后各组小鼠脾脏MDSCs细胞变化情况 | 第38-40页 |
2.3.3 不同治疗后小鼠脾脏CD4~+T细胞变化情况 | 第40-43页 |
2.3.4 不同治疗后小鼠脾脏CD8~+T细胞变化情况 | 第43-44页 |
2.3.5 不同治疗方法对脾脏中CTL细胞杀伤活性的影响 | 第44-48页 |
2.3.5.1 靶效比为 10:1 时 | 第44-46页 |
2.3.5.2 靶效比为 20:1 时 | 第46-48页 |
2.3.6 不同治疗后肿瘤组织中MDSCs数量变化情况 | 第48-50页 |
2.3.7 不同治疗后肿瘤组织中CD8~+T细胞数量变化情况 | 第50-52页 |
2.3.8 不同处理后 RM-1 细胞 EMT 相关蛋白表达 | 第52-53页 |
2.3.9 MDSCs、TGF-β、肿瘤局部 CD8~+T 细胞相关性分析 | 第53-55页 |
2.3.9.1 TGF-β1 与骨髓、脾脏以及肿瘤组织中MDSCs含量相关性分析 | 第53页 |
2.3.9.2 肿瘤组织中MDSCs含量与其间浸润的CD8~+T含量相关性分析 | 第53-54页 |
2.3.9.3 肿瘤组织中MDSCs含量外与周血IL-10 水平相关性分析 | 第54-55页 |
讨论 | 第55-60页 |
结论 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-65页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第65-66页 |
综述 转化生长因子β与肿瘤的研究进展 | 第66-76页 |
综述参考文献 | 第71-76页 |
致谢 | 第76-78页 |
个人简历 | 第78页 |