| 中英文缩略表 | 第8-10页 |
| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 第1章 文献综述 | 第15-23页 |
| 1.1 周围神经缺损修复的研究现状 | 第15-18页 |
| 1.1.1 神经导管在周围神经损伤修复中的应用 | 第15-16页 |
| 1.1.2 种子细胞在周围神经损伤修复中的应用 | 第16-18页 |
| 1.2 周围神经损伤后炎性微环境的研究现状 | 第18-21页 |
| 1.2.1 炎性细胞因子 | 第19-20页 |
| 1.2.2 炎性细胞 | 第20-21页 |
| 1.3 周围神经损伤修复效果的评估 | 第21-23页 |
| 第2章 绪论 | 第23-27页 |
| 2.1 研究背景 | 第23-24页 |
| 2.2 研究内容 | 第24-25页 |
| 2.3 拟解决的关键科学问题 | 第25页 |
| 2.4 本研究的创新点 | 第25-27页 |
| 第3章 EPI-NCSCs和OECs的分离培养与鉴定 | 第27-33页 |
| 3.1 材料 | 第27-28页 |
| 3.1.1 动物 | 第27页 |
| 3.1.2 试剂 | 第27-28页 |
| 3.1.3 主要仪器及实验用品 | 第28页 |
| 3.2 方法 | 第28-29页 |
| 3.2.1 EPI-NCSCs的原代培养 | 第28页 |
| 3.2.2 EPI-NCSCs的免疫荧光鉴定及细胞纯度的计算 | 第28页 |
| 3.2.3 OECs的原代培养 | 第28-29页 |
| 3.2.4 OECs的免疫荧光鉴定及细胞纯度的计算 | 第29页 |
| 3.2.5 统计学分析 | 第29页 |
| 3.3 结果 | 第29-32页 |
| 3.3.1 EPI-NCSCs的形态学观察、鉴定及细胞纯度的计算 | 第29-30页 |
| 3.3.2 OECs的形态学观察、鉴定及细胞纯度的计算 | 第30-32页 |
| 3.4 讨论 | 第32页 |
| 3.5 小结 | 第32-33页 |
| 第4章 EPI-NCSCs和OECs联合移植对大鼠缺损坐骨神经炎性细胞因子表达的研究 | 第33-47页 |
| 4.1 材料 | 第33-35页 |
| 4.1.1 动物 | 第33页 |
| 4.1.2 试剂 | 第33-34页 |
| 4.1.3 主要仪器及实验用品 | 第34-35页 |
| 4.2 方法 | 第35-41页 |
| 4.2.1 PLGA神经导管的制备 | 第35页 |
| 4.2.2 EPI-NCSCs和OECs的分离培养和鉴定 | 第35页 |
| 4.2.3 动物模型的建立与分组 | 第35-36页 |
| 4.2.4 Western blot检测IL-4、IL-6、IL-13 和TNF-α的表达 | 第36-39页 |
| 4.2.5 免疫组化染色观察IL-4、IL-6、IL-13 和TNF-α的表达 | 第39-40页 |
| 4.2.6 统计学分析 | 第40-41页 |
| 4.3 结果 | 第41-43页 |
| 4.3.1 Western blot检测IL-4、IL-6、IL-13 和TNF-α的表达 | 第41-42页 |
| 4.3.2 免疫组化染色观察IL-4、IL-6、IL-13 和TNF-α的表达 | 第42-43页 |
| 4.4 讨论 | 第43-45页 |
| 4.5 小结 | 第45-47页 |
| 第5章 EPI-NCSCs和OECs联合移植对大鼠缺损坐骨神经内炎性细胞作用的研究 | 第47-57页 |
| 5.1 材料 | 第47-48页 |
| 5.1.1 动物 | 第47页 |
| 5.1.2 试剂 | 第47-48页 |
| 5.1.3 主要仪器及实验用品 | 第48页 |
| 5.2 方法 | 第48-50页 |
| 5.2.1 动物模型的建立 | 第48页 |
| 5.2.2 免疫荧光染色观察细胞移植对巨噬细胞M1、M2亚型的极化作用 | 第48-49页 |
| 5.2.3 免疫荧光染色观察细胞移植对成纤维细胞的活化作用 | 第49-50页 |
| 5.2.4 统计学分析 | 第50页 |
| 5.3 结果 | 第50-54页 |
| 5.3.1 免疫荧光染色观察细胞移植对巨噬细胞M1、M2亚型的极化作用 | 第50-52页 |
| 5.3.2 免疫荧光染色观察细胞移植对成纤维细胞的活化作用 | 第52-54页 |
| 5.4 讨论 | 第54页 |
| 5.5 小结 | 第54-57页 |
| 第6章 EPI-NCSCs和OECs联合移植对大鼠缺损坐骨神经修复作用的研究 | 第57-67页 |
| 6.1 材料 | 第57-58页 |
| 6.1.1 动物 | 第57页 |
| 6.1.2 试剂 | 第57-58页 |
| 6.1.3 主要仪器及实验用品 | 第58页 |
| 6.2 方法 | 第58-60页 |
| 6.2.1 动物模型的建立 | 第58页 |
| 6.2.2 大体和术部形态学观察 | 第58-59页 |
| 6.2.3 感觉功能检测 | 第59页 |
| 6.2.4 运动功能检测 | 第59页 |
| 6.2.5 腓肠肌湿重恢复率的测定 | 第59页 |
| 6.2.6 神经电生理检测 | 第59-60页 |
| 6.3 结果 | 第60-65页 |
| 6.3.1 大体与术部形态学观察结果 | 第60-61页 |
| 6.3.2 感觉功能检测 | 第61-62页 |
| 6.3.3 运动功能检测 | 第62-63页 |
| 6.3.4 腓肠肌湿重的恢复率测定 | 第63页 |
| 6.3.5 复合肌动作电位潜伏期和波幅检测 | 第63-65页 |
| 6.4 讨论 | 第65-66页 |
| 6.5 小结 | 第66-67页 |
| 结论 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-81页 |
| 致谢 | 第81-83页 |
| 在校期间科研学术情况 | 第83页 |
