中英文缩略词表 | 第1-12页 |
中文摘要 | 第12-15页 |
Abstract | 第15-19页 |
前言 | 第19-23页 |
第一部分 种子细胞分离培养和鉴定 | 第23-30页 |
1 引言 | 第23页 |
2 实验材料 | 第23-24页 |
·实验动物 | 第23页 |
·主要试剂 | 第23-24页 |
·主要仪器 | 第24页 |
3 实验方法 | 第24-26页 |
·腹部脂肪的取材 | 第24页 |
·ADSCs的原代培养 | 第24页 |
·ADSCs的传代培养 | 第24-25页 |
·ADSCs的多向分化能力鉴定 | 第25页 |
·成脂诱导 | 第25页 |
·成骨诱导 | 第25页 |
·ADSCs表面抗原检测 | 第25-26页 |
·ADSCs增殖 | 第26页 |
4 实验结果 | 第26-27页 |
·ADSCs形态学观察 | 第26-27页 |
·ADSCs分化潜能鉴定 | 第27页 |
·ADSCs表面抗原检测 | 第27页 |
·ADSCs生长曲线测定 | 第27页 |
5 讨论 | 第27-30页 |
第二部分 ADSC aggregates-ECM复合物培养 | 第30-40页 |
1 引言 | 第30页 |
2 实验材料 | 第30-31页 |
·支架材料 | 第30页 |
·主要试剂 | 第30页 |
·主要仪器 | 第30-31页 |
3 实验方法 | 第31-35页 |
·ECM的HE染色 | 第31-32页 |
·ADSC aggregates-ECM复合物构建 | 第32页 |
·ADSC aggregates-ECM复合物检测 | 第32-35页 |
·SEM观察ADSCs粘附性及成聚合物状态 | 第32页 |
·激光共聚焦显微镜观察ADSCs在ECM上活性和凋亡情况 | 第32-33页 |
·流式细胞分析ADSCs在ECM上生长周期情况 | 第33页 |
·细胞因子表达的检测 | 第33-35页 |
·ADSCs和复合物总RNA的提取 | 第33-34页 |
·ADSCs和复合物c DNA的反转录 | 第34页 |
·RT-PCR检测 | 第34-35页 |
·统计 | 第35页 |
4 结果 | 第35-36页 |
·ECM形态学观察 | 第35页 |
·ADSCs在ECM中培养和形态学观察 | 第35-36页 |
·ADSCs在ECM中凋亡情况 | 第36页 |
·ADSCs在ECM中生长周期情况 | 第36页 |
·ADSCs在ECM中细胞因子和蛋白表达量的比较 | 第36页 |
5 讨论 | 第36-40页 |
·支架的选择 | 第36-38页 |
·ECM支架对ADSCs的影响 | 第38页 |
·细胞与支架表层界面的相互作用 | 第38-40页 |
第三部分 ADSC aggregates -ECM修复兔急性皮肤创面效果的体内检测 | 第40-56页 |
1 引言 | 第40页 |
2 实验材料 | 第40-41页 |
·实验动物和支架材料 | 第40-41页 |
·主要试剂 | 第41页 |
·主要仪器 | 第41页 |
3 实验方法 | 第41-45页 |
·实验动物的饲养 | 第41页 |
·动物创面模型的建立和移植物移植 | 第41-42页 |
·新西兰大白兔耳廓全层皮肤缺损模型的建立 | 第41-42页 |
·新西兰大白兔外耳道内壁全层皮肤缺损模型的建立 | 第42页 |
·实验动物取材和组织形态学的比较实验方法 | 第42-43页 |
·三组动物创面大小比较 | 第42页 |
·三组动物创面组织炎症和愈合后瘢痕情况的比较 | 第42-43页 |
·创面相关细胞因子表达情况检测 | 第43-44页 |
·蛋白样品的提取 | 第43页 |
·蛋白含量的测定 | 第43页 |
·SDS-PAGE电泳 | 第43-44页 |
·转膜 | 第44页 |
·封闭 | 第44页 |
·免疫反应 | 第44页 |
·化学发光 | 第44页 |
·统计 | 第44-45页 |
4 结果 | 第45-46页 |
·大体观察 | 第45页 |
·组织学HE染色 | 第45-46页 |
·外耳道内壁创面相关细胞因子表达情况 | 第46页 |
5 讨论 | 第46-49页 |
·移植物促进创面愈合及作用机制 | 第46-48页 |
·动物模型的选择 | 第48-49页 |
附图 | 第49-56页 |
结论 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-66页 |
附录 | 第66-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
综述一 | 第69-77页 |
参考文献 | 第73-77页 |
综述二 | 第77-87页 |
参考文献 | 第84-87页 |