| 目录 | 第1-4页 |
| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 前言 | 第6-11页 |
| 1. 视紫红质基因突变导致的视网膜色素变性 | 第6-7页 |
| 2. 现有的RP模型 | 第7页 |
| 3. 斑马鱼在制备疾病动物模型时的优势 | 第7-8页 |
| 4. 一种卓越的活体报告子——增强型绿色荧光蛋白(EGFP) | 第8-9页 |
| 5. 视杆细胞特异性表达启动子——XOP | 第9-11页 |
| 材料与方法 | 第11-29页 |
| 1. 鱼的养护 | 第11页 |
| 2. 分子生物学 | 第11-18页 |
| 3. 配鱼与胚胎收集 | 第18-20页 |
| 4. 制备转基因鱼 | 第20-25页 |
| 5. 胚胎/幼鱼孵育与荧光筛选 | 第25-27页 |
| 6. 免疫荧光与组织学 | 第27-28页 |
| 7. 荧光显微镜观察 | 第28-29页 |
| 结果 | 第29-37页 |
| 1. 两种转基因质粒的制备 | 第29-30页 |
| 2. 两种“暂时性”转基因斑马鱼的生成 | 第30页 |
| 3. 两种转基因鱼注射后死亡率及EGFP阳性率情况 | 第30-33页 |
| 4. 活体图像采集对转基因幼鱼的筛选 | 第33-35页 |
| 5. 冰冻切片法观察转基因鱼眼视网膜外层区域EGFP情况 | 第35-37页 |
| 讨论 | 第37-43页 |
| 1. 转基因斑马鱼对研究RP基因治疗的应用价值 | 第37页 |
| 2. “暂时性”转基因斑马鱼有望生成“经典的”转基因鱼系 | 第37-38页 |
| 3. 为什么选择R135G和G188R这两个突变位点? | 第38-39页 |
| 4. 用斑马鱼制备RP模型的优势 | 第39页 |
| 5. 1.3-kb XOP生成转基因斑马鱼模型的成本更低 | 第39-40页 |
| 6. 转基因斑马鱼生成有待改进的方面 | 第40-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 文献综述 | 第47-66页 |
| 参考文献 | 第54-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
