| 目录 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 缩略语表 | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-20页 |
| ·鲢的生物学特性及生产中的问题 | 第12页 |
| ·低氧胁迫对鱼类的生理生化影响 | 第12-13页 |
| ·低氧适应相关基因的研究 | 第13-15页 |
| ·鱼类抗氧化系统的研究 | 第15-17页 |
| ·技术路线 | 第17页 |
| ·实验器材及试剂 | 第17-19页 |
| ·实验仪器 | 第17-18页 |
| ·主要试剂 | 第18页 |
| ·常用的主要试剂配方 | 第18-19页 |
| ·本研究的目的及意义 | 第19-20页 |
| 第二章 鲢低氧诱导因子HIF-1α的克隆和序列分析及低氧胁迫下的表达分析 | 第20-42页 |
| ·材料和方法 | 第22-30页 |
| ·材料 | 第22页 |
| ·总RNA的抽提和cDNA第一链的合成 | 第22-23页 |
| ·引物设计 | 第23-24页 |
| ·鲢HIF-1α保守区RT-PCR反应 | 第24-25页 |
| ·鲢HIF-1α末端序列克隆 | 第25-26页 |
| ·PCR产物回收 | 第26-27页 |
| ·测序 | 第27-29页 |
| ·序列特征分析及系统发育分析 | 第29页 |
| ·鲢HIF-1α的组织表达及胚胎发育表达分析 | 第29-30页 |
| ·急性低氧胁迫下鲢HIF-1α的mRNA表达变化分析 | 第30页 |
| ·数据处理方法 | 第30页 |
| ·结果与分析 | 第30-38页 |
| ·RT-PCR扩增鲢HIF-1α基因cDNA核心片段 | 第30-31页 |
| ·SMART RACE法扩增鲢HIF-1α基因5’及3’末端 | 第31页 |
| ·鲢HIF-1α基因的生物信息学分析 | 第31-37页 |
| ·鲢HIF-1α的组织分布 | 第37页 |
| ·鲢HIF-1α胚胎发育过程中的表达变化 | 第37页 |
| ·急性低氧胁迫下,鲢肝脏、鳃中HIF-1α的表达变化 | 第37-38页 |
| ·讨论 | 第38-42页 |
| 第三章 鲢Cu/Zn-SOD、Mn-SOD的克隆和序列分析及急性低氧胁迫下的表达变化 | 第42-54页 |
| ·材料和方法 | 第43页 |
| ·结果与分析 | 第43-50页 |
| ·鲢Cu/Zn-SOD和Mn-SOD基因的克隆和序列特征分析 | 第43-47页 |
| ·鲢Cu/Zn-SOD和Mn-SOD氨基酸比对及系统进化分析 | 第47-48页 |
| ·鲢Cu/Zn-SOD和Mn-SOD的组织表达 | 第48-49页 |
| ·鲢Cu/Zn-SOD和Mn-SOD胚胎发育过程中的表达变化 | 第49页 |
| ·急性低氧胁迫下鲢Cu/Zn-SOD和Mn-SOD的表达变化 | 第49-50页 |
| ·讨论 | 第50-54页 |
| 第四章 鲢转铁蛋白基因cDNA的克隆及在胚胎期的表达分析 | 第54-61页 |
| ·材料和方法 | 第54页 |
| ·结果与分析 | 第54-59页 |
| ·鲢Tf cDNA的克隆及序列分析 | 第54-55页 |
| ·鲢Tf系统比对 | 第55-57页 |
| ·鲢Tf在不同组织的表达分析 | 第57-58页 |
| ·鲢Tf在胚胎发育过程中的时序表达模式及表达水平 | 第58-59页 |
| ·讨论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 附录 | 第73页 |
