| 中文摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-11页 |
| 第一部分 Neuronostatin对痛觉、胃肠运动和情绪的影响 | 第11-55页 |
| 第一章 前言 | 第11-22页 |
| 1 Neuronostatin的研究进展 | 第11-17页 |
| ·Neuronostatin的发现及结构特征 | 第11-13页 |
| ·Neuronostatin的组织分布 | 第13页 |
| ·Neuronostatin的生物学效应 | 第13-17页 |
| ·Neuronostatin的候选受体 | 第17页 |
| 2. Neuronostatin和生长抑素在分布、结构和生理功能上的异同 | 第17-19页 |
| 3. 中枢黑皮素系统 | 第19-20页 |
| ·内源性黑皮素 | 第19-20页 |
| ·黑皮素受体 | 第20页 |
| 4. 阿片系统 | 第20-21页 |
| ·内源性阿片肽 | 第20-21页 |
| ·阿片受体 | 第21页 |
| 5 GABA和GABA受体 | 第21-22页 |
| 第二章 立题依据 | 第22-23页 |
| 第三章 实验材料和方法 | 第23-28页 |
| 1 实验材料 | 第23页 |
| ·实验动物 | 第23页 |
| ·药品 | 第23页 |
| ·仪器 | 第23页 |
| 2 实验方法 | 第23-27页 |
| ·多肽合成 | 第23-25页 |
| ·实验动物模型及测试 | 第25-27页 |
| 3 统计方法 | 第27-28页 |
| 第四章 结果及其分析 | 第28-47页 |
| 1 多肽合成 | 第28-30页 |
| 2 Neuronostatin对小鼠急性痛觉的影响(小鼠热甩尾实验) | 第30-33页 |
| ·热甩尾模型中neuronostatin能诱导镇痛效应 | 第30页 |
| ·不同的受体的拮抗剂对neuronostatin诱导的镇痛效应的影响 | 第30-33页 |
| 3 Neuronostatin对小鼠慢性疼痛的影响(小鼠福尔马林实验) | 第33-37页 |
| ·慢性炎症痛觉模型侧脑室注射neuronostatin诱导痛敏效应 | 第33-34页 |
| ·Neuronostatin诱导慢性炎症痛觉模型痛敏效应的作用机制 | 第34-37页 |
| 4 侧脑室注射neuronostatin对小鼠胃肠功能的的影响 | 第37-41页 |
| ·侧脑室注射neuronostatin对小鼠胃排空率和胃肠推进率的的影响 | 第37-38页 |
| ·侧脑室注射neuronostatin抑制胃排空率和胃肠推进率的作用机制 | 第38-41页 |
| 5 侧脑室注射neuronostatin对情绪的影响 | 第41-45页 |
| ·侧脑室注射neuronostatin诱导了小鼠抑郁样行为 | 第41-42页 |
| ·侧脑室注射neuronostatin对小鼠自主活动没有显著影响 | 第42-43页 |
| ·不同受体的抑制剂对neuronostatin诱导的抑郁样行为的影响 | 第43-45页 |
| 6 C-末端未酰胺化修饰的neuronostatin的生物活性 | 第45-47页 |
| 第五章 讨论 | 第47-54页 |
| 第六章 结论 | 第54-55页 |
| 第二部分 脂基化蛋白LC3-Ⅱ的半合成 | 第55-129页 |
| 第一章 前言 | 第55-85页 |
| 1 细胞自噬 | 第55-76页 |
| ·细胞自噬的分类 | 第56-58页 |
| ·细胞自噬相关基因(autophagy-related genes,Atg) | 第58-60页 |
| ·细胞自噬的分子机制 | 第60-72页 |
| ·细胞自噬的生理功能 | 第72-76页 |
| 2 细胞自噬的研究方法 | 第76-80页 |
| ·形态学方法 | 第77-78页 |
| ·细胞自噬的特异标志物 | 第78-80页 |
| 3 蛋白化学合成 | 第80-83页 |
| ·自然化学连接(NCL) | 第80-81页 |
| ·自然化学连接(NCL)方法的改进 | 第81-82页 |
| ·表达蛋白连接(EPL) | 第82-83页 |
| 4 膜融合的研究方法 | 第83-85页 |
| ·动态光散射技术(dynamic light scattering,DLS) | 第83页 |
| ·膜脂混合测试(lipid mixing assay) | 第83-85页 |
| 第二章 立题依据 | 第85-86页 |
| 第三章 实验材料和方法 | 第86-108页 |
| 1 实验材料 | 第86-92页 |
| ·药品 | 第86-89页 |
| ·材料 | 第89-90页 |
| ·菌株 | 第90页 |
| ·仪器 | 第90-91页 |
| ·实验中用到的缓冲液和培养基 | 第91-92页 |
| 2 方法 | 第92-108页 |
| ·肽合成及分析和制备方法 | 第92-96页 |
| ·基因的克隆 | 第96-101页 |
| ·蛋白表达和纯化 | 第101-105页 |
| ·蛋白硫酯和脂肽的连接和纯化 | 第105-106页 |
| ·脂基化蛋白的纯化 | 第106页 |
| ·Atg4对LC3蛋白的剪切 | 第106-107页 |
| ·脂质体测试 | 第107-108页 |
| 第四章 结果及其分析 | 第108-124页 |
| 1 LC3-Ⅱ的合成策略 | 第108-110页 |
| 2 蛋白硫酯的表达测试 | 第110-114页 |
| ·LC3的克隆和蛋白表达测试 | 第110-111页 |
| ·MBP-LC3的克隆和蛋白表达测试 | 第111-112页 |
| ·LC3蛋白硫酯的表达和纯化 | 第112-114页 |
| 3 LC3蛋白硫酯的化学反应性测试 | 第114-117页 |
| 4 脂基化蛋白LC3-ⅡC末端脂肽的合成 | 第117-120页 |
| 5 蛋白硫酯和脂肽的连接及其产物的纯化 | 第120-122页 |
| 6 Atg4对半合成的脂基化蛋白LC3-PE的剪切 | 第122页 |
| 7 脂质体测试 | 第122-124页 |
| 第五章 讨论 | 第124-128页 |
| 第六章 结论 | 第128-129页 |
| 参考文献 | 第129-140页 |
| 附录 | 第140-147页 |
| 在学期间的研究成果 | 第147-148页 |
| 致谢 | 第148页 |
