英文缩略词 | 第1-7页 |
中文摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
引言 | 第11-13页 |
第一章 EEPL、WEPL的制备及PIP含量的测定 | 第13-19页 |
1 荜茇醇提物(Ethanol extract Piper Lonum.L,EEPL)、荜茇水提物(Waterextract Piper Longum.L,WEPL)的制备 | 第13-14页 |
2 荜茇提取物中PIP的含量测定 | 第14-19页 |
·仪器与试药 | 第14页 |
·方法与结果 | 第14-18页 |
·色谱条件 | 第14页 |
·对照品溶液的制备 | 第14页 |
·供试品溶液的制备 | 第14-15页 |
·线性关系的考察 | 第15-16页 |
·精密度实验 | 第16页 |
·稳定性试验 | 第16页 |
·重复性实验 | 第16页 |
·加样回收率实验 | 第16-17页 |
·供试品含量测定 | 第17-18页 |
·小结 | 第18-19页 |
第二章 3T3-L1前脂肪细胞的培养及IR细胞模型的建立 | 第19-31页 |
1 实验材料 | 第19-21页 |
·实验细胞 | 第19页 |
·实验仪器 | 第19页 |
·实验试剂 | 第19-20页 |
·试剂配制 | 第20-21页 |
2 实验方法 | 第21-22页 |
·细胞的培养 | 第21页 |
·诱导细胞分化 | 第21-22页 |
·油红O染色 | 第22页 |
·IR模型的制备 | 第22页 |
·数据统计 | 第22页 |
3 实验结果 | 第22-31页 |
·3T3-L1前脂肪细胞的鉴定 | 第22-23页 |
·3T3-L1前脂肪细胞诱导分化的形态学判断 | 第23-26页 |
·IR模型的制备 | 第26-31页 |
·细胞形态的变化 | 第27-29页 |
·造模后细胞上清液中葡萄糖含量的变化 | 第29页 |
·小结 | 第29-31页 |
第三章 EEPL、WEPL及PIP对IR细胞模型的作用研究 | 第31-50页 |
1 实验材料 | 第31-32页 |
·实验仪器 | 第31页 |
·实验试剂 | 第31页 |
·试剂配制 | 第31-32页 |
2 实验方法 | 第32-34页 |
·MTT比色实验 | 第32-33页 |
·分组及给药浓度 | 第32页 |
·作用时间 | 第32页 |
·实验方法 | 第32-33页 |
·数据统计 | 第33页 |
·荜茇提取物对3T3-L1脂肪细胞IR细胞模型的作用研究 | 第33-34页 |
·分组及给药浓度 | 第33页 |
·作用时间 | 第33页 |
·实验方法 | 第33页 |
·数据统计 | 第33-34页 |
3 实验结果 | 第34-49页 |
·MTT比色实验 | 第34-37页 |
·荜茇提取物对3T3-L1脂肪细胞IR细胞模型的作用研究 | 第37-49页 |
·细胞形态的变化 | 第37-47页 |
·各给药组作用于IR细胞模型后细胞上清液中葡萄糖含量的变化 | 第47-49页 |
4 小结 | 第49-50页 |
讨论 | 第50-55页 |
1 研究意义 | 第50-51页 |
2 荜爱提取物的制备和含量测定 | 第51页 |
3 3T3-L1前脂肪细胞的培养与诱导分化及油红0染色 | 第51-53页 |
4 3T3-L1脂肪细胞IR模型的建立 | 第53页 |
5 MTT实验 | 第53-54页 |
6 EEPL、WEPL及PIP对IR细胞模型的作用研究 | 第54页 |
7 存在问题 | 第54-55页 |
8 展望 | 第55页 |
参考文献 | 第55-58页 |
文献综述 | 第58-66页 |
参考文献 | 第63-66页 |
发表文章目录 | 第66-67页 |
致谢 | 第67页 |