| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 1 前言 | 第9-21页 |
| ·SP作用及研究进展 | 第9-13页 |
| ·SP的发现及生物学特点 | 第9页 |
| ·SP的分布 | 第9-11页 |
| ·SP的作用 | 第11-13页 |
| ·Wnt信号通路在皮肤中的研究 | 第13-17页 |
| ·Wnt信号通路 | 第13-14页 |
| ·β-catenin作用及调控 | 第14-16页 |
| ·Wnt信号通路对皮肤生长发育的影响 | 第16-17页 |
| ·BMP信号通路对毛囊发生及周期的影响 | 第17-20页 |
| ·TGF-β信号通路 | 第17页 |
| ·BMP信号通路 | 第17-18页 |
| ·BMP在毛囊发生及周期中的作用 | 第18-20页 |
| ·本项目研究的目的及意义 | 第20-21页 |
| 2 实验一 绒山羊皮肤干细胞的复苏及SP对其生长的影响 | 第21-31页 |
| ·实验材料 | 第21页 |
| ·主要实验仪器及耗材 | 第21页 |
| ·主要试剂 | 第21页 |
| ·几种溶液及培养液的配制 | 第21页 |
| ·实验方法 | 第21-23页 |
| ·培养皿的处理 | 第21-22页 |
| ·内蒙古绒山羊皮肤干细胞的复苏 | 第22页 |
| ·皮肤干细胞的传代培养 | 第22页 |
| ·皮肤干细胞的冻存 | 第22页 |
| ·SP对皮肤干细胞的生长影响 | 第22-23页 |
| ·结果与分析 | 第23-29页 |
| ·干细胞的复苏 | 第23页 |
| ·干细胞的传代 | 第23-24页 |
| ·SP对干细胞的影响 | 第24-29页 |
| ·讨论 | 第29-30页 |
| ·结论 | 第30-31页 |
| 3 实验二 SP最适浓度的选择 | 第31-48页 |
| ·实验材料 | 第31页 |
| ·主要实验仪器及耗材 | 第31页 |
| ·主要试剂 | 第31页 |
| ·主要试剂配方 | 第31页 |
| ·实验方法 | 第31-36页 |
| ·培养皿的处理 | 第31-32页 |
| ·皮肤千细胞的解冻 | 第32页 |
| ·SP处理皮肤干细胞 | 第32页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第32页 |
| ·RNA琼脂糖凝胶电泳检测 | 第32-33页 |
| ·RT-PCR制备cDNA | 第33页 |
| ·荧光定量PCR引物设计及合成 | 第33-34页 |
| ·β-catenin、BMP2/4及β-actin目的片段PCR扩增及回收 | 第34-35页 |
| ·相对定量PCR检测β-catenin及BMP2/4基因在不同组中的表达 | 第35-36页 |
| ·结果与分析 | 第36-45页 |
| ·细胞总RNA提取 | 第36页 |
| ·目的基因片段特异性扩增 | 第36-37页 |
| ·β-catenin、BMP2/4及β-actin基因标准曲线 | 第37-38页 |
| ·β-catenin、BMP2/4及β-actin基因扩增曲线及熔解曲线 | 第38-39页 |
| ·SP刺激后β-catenin表达量及与空白对照组表达量的变化关系 | 第39-41页 |
| ·SP刺激后BMP2表达量及与空白对照组表达量的变化关系 | 第41-43页 |
| ·SP刺激后BMP4表达量及与空白对照组表达量的变化关系 | 第43-45页 |
| ·讨论 | 第45-47页 |
| ·结论 | 第47-48页 |
| 4 实验三 SP受体对β-catenin与BMP2/4 表达的影响 | 第48-57页 |
| ·实验材料 | 第48页 |
| ·主要实验仪器及耗材 | 第48页 |
| ·主要试剂 | 第48页 |
| ·实验方法 | 第48-49页 |
| ·皮肤干细胞的培养 | 第48-49页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第49页 |
| ·cDNA获取 | 第49页 |
| ·定量PCR检测β-catenin及BMP2/4基因在不同组中的表达 | 第49页 |
| ·结果与分析 | 第49-56页 |
| ·SP刺激后β-catenin表达量及与空白对照组表达量的比值变化 | 第49-51页 |
| ·SP刺激后BMP2表达量及与空白对照组表达量的比值变化 | 第51-53页 |
| ·SP刺激后BMP4表达量及与空白对照组表达量的比值变化 | 第53-56页 |
| ·讨论 | 第56页 |
| ·结论 | 第56-57页 |
| 5 全文结论 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 作者简介 | 第65页 |
