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TAT-Apoptin原核表达载体的构建、可溶性表达及体外活性检测

摘要第1-6页
ABSTRACT第6-11页
图表目录第11-13页
引言第13-20页
   ·选题的目的和意义第13-14页
   ·Apoptin第14-16页
   ·PTD 序列第16-20页
第1章 实验仪器、实验试剂及基本实验方法第20-28页
   ·实验药品和生化试剂第20-21页
   ·实验器材第21页
   ·实验常用试剂配制第21-22页
   ·实验室常用的基本实验方法第22-28页
     ·提取质粒第22页
     ·DNA 产物纯化第22-23页
     ·DNA 片段回收第23页
     ·制备感受态细胞第23-24页
     ·转化第24页
     ·挑菌保存第24-25页
     ·凝胶电泳第25页
     ·SDS—PAGE 凝胶制备第25-26页
     ·样品处理与 SDS-PAGE 电泳第26-27页
     ·考马斯亮蓝染色第27-28页
第2章 Apoptin 基因的获得及其原核表达载体的构建第28-36页
   ·实验目的第28页
   ·实验设计第28页
   ·实验方法第28-32页
     ·Apoptin 全序列引物设计第28-29页
     ·PCR 扩增 Apoptin 基因第29页
     ·T-A 克隆保存 Apoptin 基因并测序第29-30页
     ·PCR 获得的 Apoptin 序列与数据库收录的 Apoptin 序列比对第30页
     ·构建 pET-30a-Apoptin 原核表达质粒第30-31页
     ·pET-30a-Apoptin 质粒的原核表达第31-32页
   ·实验结果第32-35页
     ·Apoptin 序列的获得第32页
     ·PCR 鉴定第32-33页
     ·序列测定及比对第33页
     ·pET-30a-Apoptin 构建结果第33-34页
     ·pET-30a-Apoptin 质粒的原核表达结果第34-35页
   ·本章小结与讨论第35-36页
第3章 TAT 序列的获得及 pET-30a-TAT-GFP 质粒的构建和表达第36-46页
   ·实验目的第36页
   ·实验设计第36-37页
   ·实验方法第37-40页
     ·人工合成 TAT 序列第37页
     ·构建 pET-30a-TAT 质粒第37-38页
     ·构建 pET-30a-TAT-EGFP 质粒和 pET-30a -EGFP 质粒第38-39页
     ·TAT-EGFP 融合蛋白的原核表达及纯化第39-40页
     ·TAT-EEGFP 融合蛋白体外穿膜实验第40页
   ·实验结果第40-45页
     ·TAT 双链合成结果第40-41页
     ·EGFP 序列扩增第41-42页
     ·构建的 pET-30a-TAT-EGFP 质粒 PCR 验证第42页
     ·TAT-EGFP 基因的诱导表达与鉴定第42-43页
     ·TAT-EGFP 亲和纯化第43-44页
     ·TAT 膜穿透活性研究第44-45页
   ·小结与讨论第45-46页
第 4 章 TAT-Apoptin 融合蛋白原核表达系统的构建、可溶性表达、纯化及活性检测第46-62页
   ·实验目的第46页
   ·实验设计第46-47页
   ·实验方法第47-50页
     ·构建 pET-30a-TAT-Apoptin 质粒和 pGEX-6p-1-TAT-Apoptin 质粒第47页
     ·原核表达 TAT-Apoptin 融合蛋白第47-48页
     ·优化融合蛋白原核可溶性表达的条件第48页
     ·融合蛋白的纯化第48-49页
     ·融合蛋白体外活性检测第49-50页
   ·实验结果第50-60页
     ·构建 pET-30a-TAT-Apoptin 质粒第50-52页
     ·构建 pGEX-6p-1-TAT-Apoptin 质粒的结果第52-53页
     ·原核表达 TAT-Apoptin 融合蛋白结果第53-54页
     ·摸索融合蛋白原核可溶性表达的条件第54-58页
     ·TAT-Apoptin 融合蛋白纯化结果第58-59页
     ·融合蛋白活性 MTT 检测结果第59-60页
   ·本章小结与讨论第60-62页
第5章 结论第62-64页
参考文献第64-67页
攻读学位期间发表的学术论文及参加科研情况第67-68页
致谢第68-69页

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