| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第11-37页 |
| 1.1 群体感应系统概述 | 第11-18页 |
| 1.1.1 QS系统的发现 | 第11-13页 |
| 1.1.2 铜绿假单胞菌QS系统组成及调控网络关系 | 第13-14页 |
| 1.1.3 铜绿假单胞菌致病性与QS联系 | 第14-18页 |
| 1.2 鼠李糖脂的生物学特征及其应用 | 第18-23页 |
| 1.2.1 生物表面活性剂简介 | 第18-20页 |
| 1.2.2 鼠李糖脂在铜绿假单胞菌体内合成途径 | 第20-21页 |
| 1.2.3 鼠李糖脂的功能研究 | 第21-23页 |
| 1.3 多色成像技术的研究进展 | 第23-32页 |
| 1.3.1 多色成像技术相关研究举例 | 第25-26页 |
| 1.3.2 荧光蛋白多色成像在生物学研究中的应用 | 第26-32页 |
| 1.4 绪论总结 | 第32-37页 |
| 第二章 鼠李糖脂阻挡铜绿假单胞菌摄取AHL-QS信号分子研究 | 第37-65页 |
| 2.1 双色gene reporter放大器方法建立 | 第37-44页 |
| 2.1.1 原理简介 | 第37-39页 |
| 2.1.2 RG ratio表征有效提高信噪比 | 第39页 |
| 2.1.3 montageScan方法用于提高样本容量 | 第39-42页 |
| 2.1.4 Flowcell中的RG ratio标准诱导曲线 | 第42-44页 |
| 2.2 板底C4-HSL-C12-HSL RG ratio曲线不同 | 第44-45页 |
| 2.2.1 实验方法 | 第44页 |
| 2.2.2 结果与讨论 | 第44-45页 |
| 2.3 鼠李糖脂导致板底AHL信号分子不均匀分布 | 第45-48页 |
| 2.4 Rhamnolipid在溶液环境的阻挡作用减弱 | 第48-51页 |
| 2.5 体外Rhamnolipid相关实验 | 第51-53页 |
| 2.5.1 Orcinol法验证Rhamnolipid过表达效果 | 第51-52页 |
| 2.5.2 鼠李糖脂阻挡C4-HSL信号分子体外扩散 | 第52-53页 |
| 2.6 1-8 ANS染色表征菌身亲疏水性与Rhamnolipid相关 | 第53-55页 |
| 2.6.1 实验原理 | 第54页 |
| 2.6.2 实验流程 | 第54页 |
| 2.6.3 结果与讨论 | 第54-55页 |
| 2.7 JP2相关变种与野生型共混实验结果 | 第55-58页 |
| 2.7.1 溶液摇菌共混培养 | 第57页 |
| 2.7.2 板底共混培养 | 第57-58页 |
| 2.8 RahU-Rhamnolipid共同介导阻挡作用 | 第58-60页 |
| 2.9 本章总结与展望 | 第60-65页 |
| 第三章 多色荧光成像系统定量表征方法建立 | 第65-81页 |
| 3.1 传统多色荧光蛋白混用的局限性 | 第65-66页 |
| 3.2 多色荧光成像系统定量表征 | 第66-77页 |
| 3.2.1 荧光定量基本原理 | 第66-68页 |
| 3.2.2 实验流程 | 第68-77页 |
| 3.3 实验结果 | 第77-79页 |
| 3.3.1 单色混菌光谱分离校正 | 第77-78页 |
| 3.3.2 一菌多色光谱分离校正 | 第78-79页 |
| 3.4 本章总结 | 第79-81页 |
| 第四章 多色荧光成像系统在QS研究中的应用 | 第81-89页 |
| 4.1 建立四色QS-reporter研究QS一级二级系统的联系 | 第81-83页 |
| 4.2 板底实验结果及讨论 | 第83-86页 |
| 4.2.1 QS信号分子板底诱导曲线 | 第83页 |
| 4.2.2 结果分析与讨论 | 第83-86页 |
| 4.3 C12+LasR/C4+Rh1R组合特异性 | 第86-88页 |
| 4.4 本章总结 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-99页 |
| 致谢 | 第99-101页 |
| 在读期间发表的学术论文与取得的研究成果 | 第101页 |
