| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 第一部分 白藜芦醇理化性质研究 | 第15-21页 |
| 一 仪器与试药 | 第15页 |
| 二 实验方法与结果 | 第15-19页 |
| (一) 白藜芦醇溶解行为研究 | 第15-16页 |
| (二) 白藜芦醇的紫外吸收特征 | 第16页 |
| (三) 白藜芦醇含量测定方法的建立 | 第16-18页 |
| (四) 白藜芦醇有关物质检查 | 第18-19页 |
| (五) 白藜芦醇对温度、光线及湿度的稳定性研究 | 第19页 |
| 三 小结与讨论 | 第19-21页 |
| 第二部分 氨基游离的壳聚糖纳米粒制备工艺及相关性质研究 | 第21-48页 |
| 一 仪器与试药 | 第21页 |
| 二 实验方法与结果 | 第21-43页 |
| (一) 空白壳聚糖纳米粒制备工艺及相关性质研究 | 第21-28页 |
| (二) Res-CS-NP制备工艺及相关性质研究 | 第28-35页 |
| (三) Res-CS-NP体外释放试验 | 第35-43页 |
| 三 小结与讨论 | 第43-48页 |
| (一) 关于空白壳聚糖纳米粒制备工艺及相关性质研究 | 第43-45页 |
| (二) 关于Res-CS-NP制备工艺及相关性质研究 | 第45-46页 |
| (三) 关于Res-CS-NP体外释放试验 | 第46-48页 |
| 第三部分 不同配体修饰的壳聚糖纳米粒制备工艺与相关性质研究 | 第48-72页 |
| 一 仪器与试药 | 第48-49页 |
| 二 实验方法与结果 | 第49-67页 |
| (一) 空白B-CS-NP及A-B-CS-NP制备工艺研究 | 第49-56页 |
| (二) 含药B-CS-NP与A-B-CS-NP制备工艺研究 | 第56-66页 |
| (三) 含药A-B-CS-NP的冻干针剂制备工艺研究 | 第66-67页 |
| 三 小结与讨论 | 第67-72页 |
| 第四部分 白藜芦醇壳聚糖纳米粒在小鼠体内分布与药物动力学研究 | 第72-90页 |
| 一 仪器、试药与动物 | 第72页 |
| 二 实验方法与结果 | 第72-88页 |
| (一) 白藜芦醇在血浆及各组织中HPLC测定方法研究 | 第72-77页 |
| (二) 含药CS-NP、B-CS-NP及A-B-CS-NP与药物溶液静注后在小鼠体内分布研究 | 第77-81页 |
| (三) 含药CS-NP,B-CS-NP及A-B-CS-NP与药物溶液静注后在小鼠血液和肝脏中的药物动力学研究 | 第81-88页 |
| 三 小结与讨论 | 第88-90页 |
| 第五部分 人HepG2肝癌细胞对壳聚糖纳米粒体外摄取特性研究 | 第90-105页 |
| 一 仪器与试药 | 第90页 |
| 二 方法与结果 | 第90-102页 |
| (一) FITC标记的纳米粒的制备 | 第90-91页 |
| (二) FITC标记的纳米粒相关性质研究 | 第91-95页 |
| (三) 细胞生长曲线的绘制 | 第95-96页 |
| (四) 细胞摄取试验 | 第96-100页 |
| (五) 细胞摄取的定性观察 | 第100-102页 |
| 三 小结与讨论 | 第102-105页 |
| 第六部分 白藜芦醇壳聚糖纳米粒的体外活性研究 | 第105-117页 |
| 一 仪器与试药 | 第105页 |
| 二 方法与结果 | 第105-115页 |
| (一) 细胞培养 | 第105页 |
| (二) 戊二醛浓度对细胞的抑制作用 | 第105-107页 |
| (三) 不同固化程度的CS-NP对细胞的抑制作用 | 第107-109页 |
| (四) 空白纳米粒对细胞的抑制作用 | 第109-110页 |
| (五) 含药纳米粒对细胞的抑制作用 | 第110-113页 |
| (六) 制剂在培养液中的稳定性 | 第113-114页 |
| (七) 显微镜观察 | 第114-115页 |
| 三 小结与讨论 | 第115-117页 |
| 结论 | 第117-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
| 主要参考文献 | 第120-123页 |
| 综述 | 第123-133页 |
