| 中文摘要 | 第1-14页 |
| Abstraction | 第14-19页 |
| 第一章 引言 | 第19-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-33页 |
| 2．1 实验设备 | 第23-24页 |
| 2．2 药品及溶液配制 | 第24-25页 |
| 2．3 单细胞的制备 | 第25-26页 |
| 2．4 电生理实验 | 第26-32页 |
| 2．4．1 传统全细胞模式的记录 | 第28-30页 |
| 2．4．2 穿孔模式的全细胞记录 | 第30-32页 |
| 2．5 统计学处理 | 第32-33页 |
| 第三章 实验结果 | 第33-66页 |
| 3．1 急性分离的豚鼠胃窦环行肌细胞的形态及其物理特性 | 第33-34页 |
| 3．2 硝普钠对I_（K（ca））的影响 | 第34-43页 |
| 3．2．1 I_（K（ca））的引导及其电学特性 | 第34-36页 |
| 3．2．2 在传统全细模式下，SNP对I_（K（Ca））的影响 | 第36-39页 |
| 3．2．3 在穿孔模式下，SNP对I_（K（Ca））的影响 | 第39页 |
| 3．2．4 在穿孔模式下，SNP浓度与I_（K（Ca））增加的关系 | 第39-43页 |
| 3．2．5 穿孔模式下，SNP对I_（K（ca））影响的潜伏期测定 | 第43页 |
| 3．3 胞外Ca~（2+）对SNP增加I_（K（ca））效应的影响 | 第43-54页 |
| 3．3．1 在穿孔模式下，SNP对Ca~（2+）电流的影响 | 第43-49页 |
| 3．3．1．1 穿孔模式下，Ca~（2+）电流的特性： | 第43-49页 |
| 3．3．1．1．1 Ca~（2+）电流的引导： | 第43-45页 |
| 3．3．1．1．2 用Ba~（2+）替代胞外Ca~（2+）对I_（Ca）的影响 | 第45页 |
| 3．3．1．1．3 尼卡地平对I_（Ba）的影响 | 第45-49页 |
| 3．3．1．2 穿孔模式下，SNP对I_（Ba）的影响 | 第49页 |
| 3．3．2 尼卡地平的影响 | 第49-54页 |
| 3．3．3 胞外无钙时，SNP对I_（K（Ca））的影响 | 第54页 |
| 3．4 胞内钙库释放Ca~（2+）对SNP引起I_（K（ca））增加的影响 | 第54-64页 |
| 3．4．1 SNP对STOCs的影响 | 第54-60页 |
| 3．4．1．1 全细胞模式下，STOCs的引导 | 第54-56页 |
| 3．4．1．2 传统全细胞模式和穿孔模式下，SNP对STOCs的影响 | 第56-60页 |
| 3．4．1 肝素对SNP引发STOCs增加的影响 | 第60页 |
| 3．4．2 Ryanodine对SNP引发STOCs增加的影响 | 第60-64页 |
| 3．5 胞内第二信使cGMP对SNP引起STOCs增加的影响 | 第64-66页 |
| 第四章 讨论 | 第66-75页 |
| 4．1 豚鼠胃窦环行肌细胞的生物物理学特性 | 第66-67页 |
| 4．2 NO对钙敏感性钾电流的影响 | 第67-69页 |
| 4．2．1 I_（K（Ca））与I_（K（V））的分离 | 第67-68页 |
| 4．2．2 NO对钙敏感性钾电流的影响 | 第68-69页 |
| 4．3 胞内外钙对NO引发钙敏感性钾电流增加的影响 | 第69-71页 |
| 4．3．1 胞外钙对NO引发钙敏感性钾电流增加的影响 | 第69-71页 |
| 4．3．2 胞内钙对SNP引起I_（K（ca））增加的影响 | 第71页 |
| 4．4 cGMP在SNP引发I_（K（Ca））增加中的作用 | 第71-72页 |
| 4．5 尚待研究的问题 | 第72-75页 |
| 第五章 结论 | 第75-76页 |
| 第六章 综述 | 第76-88页 |
| 6．1 NO对胞内钙库释放钙离子的影响 | 第79-84页 |
| 6．1．1 IP_3引导的钙释放 | 第80-83页 |
| 6．1．2 Ryanodine介导钙释放的影响 | 第83-84页 |
| 6．2 NO对L-型钙通道的影响 | 第84-86页 |
| 6．3 小结 | 第86-88页 |
| 参考文献 | 第88-111页 |
| 致谢 | 第111页 |
