| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-22页 |
| 1 Cd在植物中的累积及其毒害作用 | 第13-15页 |
| ·Cd~(2+)在根中的累积及其生长抑制作用 | 第13页 |
| ·Cd~(2+)在叶中的累积及其生长抑制作用 | 第13页 |
| ·Cd~(2+)在细胞中的累积及其离子毒害作用 | 第13-15页 |
| ·Cd~(2+)诱导氧化胁迫反应 | 第14页 |
| ·离子失衡 | 第14-15页 |
| 2 植物对重金属Cd的响应途径及其调控机理 | 第15-20页 |
| ·Cd~(2+)胁迫下的植物抗氧化系统 | 第15-16页 |
| ·植物硫代谢对Cd~(2+)胁迫的响应 | 第16-18页 |
| ·Cd的跨膜运输及其调控 | 第18-20页 |
| 3 研究课题的提出 | 第20-22页 |
| 第二章 紫花苜蓿抗镉品种的筛选 | 第22-35页 |
| 1 引言 | 第22-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-27页 |
| ·材料 | 第23-26页 |
| ·抗镉筛选试验 | 第26-27页 |
| ·数据统计分析 | 第27页 |
| 3 结果和分析 | 第27-31页 |
| ·紫花苜蓿Cd~(2+)筛选浓度确定 | 第27页 |
| ·抗镉紫花苜蓿品种筛选 | 第27-31页 |
| 4 讨论 | 第31-35页 |
| 第三章 紫花苜蓿抗性品种对镉胁迫的生理响应 | 第35-49页 |
| 1 引言 | 第35-36页 |
| 2 材料与方法 | 第36-40页 |
| ·材料 | 第36页 |
| ·CdCl_2胁迫处理 | 第36-37页 |
| ·紫花苜蓿根、茎和叶中镉含量测定 | 第37页 |
| ·紫花苜蓿叶片抗氧化酶活性测定 | 第37-38页 |
| ·酶液的提取 | 第37页 |
| ·SOD酶活性测定 | 第37页 |
| ·POD酶活性测定 | 第37-38页 |
| ·CAT酶活性测定 | 第38页 |
| ·MDA含量测定 | 第38页 |
| ·光合活性的测定 | 第38-39页 |
| ·叶绿素含量的测定 | 第39页 |
| ·数据分析 | 第39-40页 |
| 3 结果 | 第40-46页 |
| ·抗镉苜蓿品种植株体内镉的吸收和累积 | 第40-41页 |
| ·Cd~(2+)对抗氧化酶活性的影响 | 第41-44页 |
| ·Cd~(2+)对膜质过氧化的影响 | 第44页 |
| ·Cd~(2+)对叶绿素含量的影响 | 第44-45页 |
| ·Cd~(2+)对叶绿素荧光的影响 | 第45-46页 |
| 4 讨论 | 第46-49页 |
| ·抗镉苜蓿品种抗氧化酶系统对Cd~(2+)胁迫的响应 | 第46-47页 |
| ·抗镉苜蓿品种光合系统对Cd~(2+)胁迫的响应 | 第47-49页 |
| 第四章 紫花苜蓿金属硫蛋白基因差异显示分析 | 第49-66页 |
| 1 引言 | 第49-50页 |
| 2 材料与方法 | 第50-57页 |
| ·材料 | 第50-51页 |
| ·植物材料 | 第50页 |
| ·菌株和质粒载体 | 第50-51页 |
| ·CdCl_2胁迫处理 | 第51页 |
| ·植物总RNA的提取 | 第51-52页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第52页 |
| ·苜蓿金属硫蛋白基因引物的确定 | 第52-53页 |
| ·目的条带的扩增与检测 | 第53-54页 |
| ·目的DNA片段的回收 | 第54页 |
| ·PCR产物连接及转化 | 第54-56页 |
| ·连接反应(PCR产物与PUCm-T载体连接) | 第54-55页 |
| ·大肠杆菌DH5α菌体培养 | 第55页 |
| ·大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备 | 第55页 |
| ·连接产物的转化 | 第55-56页 |
| ·阳性克隆的筛选 | 第56页 |
| ·质粒DNA的提取 | 第56页 |
| ·质粒DNA的PCR | 第56-57页 |
| ·数据分析 | 第57页 |
| 3 结果 | 第57-65页 |
| ·苜蓿抗性品种目的条带的检测 | 第57-59页 |
| ·目的条带的回收及其检测 | 第59页 |
| ·苜蓿MsMT2a和MsMT2b的克隆及其序列分析 | 第59-65页 |
| 4 讨论 | 第65-66页 |
| 第五章 结论 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-77页 |
| 硕士期间发表论文和项目资助情况 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78页 |