| 致谢 | 第1-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| 英文摘要 | 第7-9页 |
| 目次 | 第9-11页 |
| 1 引言 | 第11-14页 |
| 2 实验材料和仪器 | 第14-18页 |
| ·细胞株和实验动物 | 第14页 |
| ·细胞培养液 | 第14页 |
| ·抗体 | 第14页 |
| ·化合物和其他试剂 | 第14-15页 |
| ·主要耗材 | 第15页 |
| ·主要实验仪器 | 第15-16页 |
| ·配置的试剂 | 第16-18页 |
| 3 实验方法 | 第18-25页 |
| ·分子生物学常规方法 | 第18页 |
| ·细胞培养 | 第18页 |
| ·MTT法测定IC50值 | 第18页 |
| ·Western Blot免疫印迹反应 | 第18-19页 |
| ·流式细胞术测定细胞凋亡 | 第19页 |
| ·逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第19-20页 |
| ·质粒转染 | 第20-21页 |
| ·基因沉默(siRNA) | 第21页 |
| ·Hoechst染色观察细胞核形态变化 | 第21页 |
| ·pGL3-CHOP报告基因质粒的构建 | 第21-23页 |
| ·HEK293/CHOP稳定表达细胞株的建立 | 第23页 |
| ·移植瘤小鼠模型评价化合物体内药效 | 第23页 |
| ·数据统计学处理 | 第23-25页 |
| 4 结果 | 第25-43页 |
| ·高通量筛选模型的建立和化合物库的筛选 | 第25-29页 |
| ·HEK293/CHOP稳定表达细胞株的建立 | 第25-27页 |
| ·高通量筛选模型的建立及化合物库的筛选 | 第27-29页 |
| ·化合物对细胞增殖的抑制作用 | 第29-30页 |
| ·LGH00168的体内药效 | 第30-32页 |
| ·LGH00168引起Hela细胞的增殖抑制和凋亡 | 第32-35页 |
| ·LGH00168对子宫颈癌细胞Hela细胞增殖的影响 | 第32-33页 |
| ·LGH00168对子宫颈癌细胞凋亡的影响 | 第33-34页 |
| ·LGH00168对子宫颈癌细胞凋亡相关蛋白的影响 | 第34-35页 |
| ·LGH00168对CHOP及相关通路的影响 | 第35-39页 |
| ·ERS相关通路和CHOP的变化 | 第35-37页 |
| ·CHOP变化引起的下游通路的变化 | 第37-38页 |
| ·沉默CHOP抑制LGH00168促凋亡效果 | 第38-39页 |
| ·LGH00168激活CHOP的分子机制 | 第39-41页 |
| ·CHOP启动子中不同区段的激活情况 | 第39-40页 |
| ·介导CHOP启动子中不同区段激活的蛋白的变化情况 | 第40-41页 |
| ·LGH00168和其他药物的联合用药 | 第41-43页 |
| 5 讨论 | 第43-46页 |
| 6 总结 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 综述 | 第50-59页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第59-60页 |
| 作者简历 | 第60页 |
