| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 1 引言 | 第8-13页 |
| ·白玉蜗牛简介 | 第8-9页 |
| ·形态特征 | 第8页 |
| ·生殖和发育 | 第8页 |
| ·生活习性 | 第8-9页 |
| ·自身价值 | 第9页 |
| ·蜗牛β-甘露聚糖酶研究背景 | 第9-11页 |
| ·β-甘露聚糖酶研究进展 | 第9-10页 |
| ·β-甘露聚糖酶的作用方式及结构分析 | 第10页 |
| ·β-甘露聚糖酶的来源与功能 | 第10-11页 |
| ·β-甘露聚糖酶提取分离纯化鉴定原理 | 第11-12页 |
| ·根据蛋白质溶解度不同的分离方法 | 第11页 |
| ·根据蛋白质带电性质进行分离 | 第11-12页 |
| ·酶联免疫吸附测定法（ELISA） | 第12页 |
| ·β-甘露聚糖酶的应用与开发 | 第12页 |
| ·研究的目的和意义 | 第12-13页 |
| 2 材料与方法 | 第13-29页 |
| ·材料 | 第13-16页 |
| ·动物材料 | 第13页 |
| ·主要试剂 | 第13-14页 |
| ·试剂的配制 | 第14-16页 |
| ·主要仪器 | 第16页 |
| ·实验方法 | 第16-29页 |
| ·蜗牛的养殖 | 第16-17页 |
| ·粗蜗牛β-甘露聚糖酶的提取 | 第17-18页 |
| ·蜗牛β-甘露聚糖酶活性测定 | 第18-19页 |
| ·蛋白含量分析 | 第19-20页 |
| ·蜗牛β-甘露聚糖酶纯化方法 | 第20-22页 |
| ·ELISA 法检测β-甘露聚糖酶 | 第22-24页 |
| ·SDS-PAGE 鉴定β-甘露聚糖酶的纯度 | 第24页 |
| ·测定纯化的β-甘露聚糖酶的相对分子量和测序 | 第24-25页 |
| ·蜗牛β-甘露聚糖酶基因片段的扩增 | 第25-29页 |
| 3 结果 | 第29-39页 |
| ·粗酶提取缓冲液的确定 | 第29-30页 |
| ·PH 值为7.0 和8.0 的0.02M Na_2HPO_4-NaH_2PO_4组织提取液SDS-PAGE 图 | 第29-30页 |
| ·pH 值 为 7.0 和 8.0 的 0.02M Na2CO3-NaHCO3 组织提取液 SDS-PAGE 图 | 第30页 |
| ·SDS-PAGE 最佳胶浓度的确定 | 第30-31页 |
| ·硫酸铵分级分离β-甘露聚糖酶最佳饱和度的确定 | 第31-32页 |
| ·硫酸铵分级分离蜗牛肝脏β-甘露聚糖酶样的SDS-PAGE 电泳图 | 第32页 |
| ·β-甘露聚糖酶的制备 | 第32-33页 |
| ·直接ELISA 法检测蜗牛β-甘露聚糖酶 | 第33-37页 |
| ·羊抗兔（HRP-IgG）的最适稀释倍数的确定 | 第33-34页 |
| ·抗原最适稀释倍数的确定 | 第34页 |
| ·兔抗β-甘露聚糖酶多克隆抗体最适稀释倍数的确定 | 第34页 |
| ·直接ELISA 法检测β-甘露聚糖酶结果 | 第34-35页 |
| ·间接ELISA 法检测β-甘露聚糖酶结果 | 第35-36页 |
| ·SDS-PAGE 测定纯化样品β-甘露聚糖酶的分子量 | 第36页 |
| ·蜗牛肝脏β-甘露聚糖酶制备电泳结果 | 第36-37页 |
| ·蜗牛β-甘露聚糖酶基因部分区域扩增与序列测定 | 第37-39页 |
| ·β-甘露聚糖酶N-端部分氨基酸序列测定 | 第37页 |
| ·蜗牛肝脏组织总RNA 提取结果鉴定 | 第37页 |
| ·蜗牛β-甘露聚糖酶cDNA 部分区域扩增及其序列测定 | 第37-38页 |
| ·软体动物β-甘露聚糖酶基因序列比对分析结果 | 第38-39页 |
| ·软体动物β-甘露聚糖酶氨基酸序列比对分析结果 | 第39页 |
| 4 讨论 | 第39-40页 |
| 5 结论 | 第40-41页 |
| 致谢 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-50页 |
| 作者简介 | 第50页 |
