| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第13-18页 |
| 1.1 课题研究的背景及意义 | 第13-14页 |
| 1.2 国内外的研究现状 | 第14-16页 |
| 1.3 本文研究内容与主要特点 | 第16-18页 |
| 1.3.1 研究内容 | 第16-17页 |
| 1.3.2 主要特点 | 第17页 |
| 1.3.3 课题的实施方案 | 第17-18页 |
| 第二章 丝素蛋白/II型胶原复合膜的力学性能和力学行为的本构描述 | 第18-30页 |
| 2.1 引言 | 第18-19页 |
| 2.2 实验材料 | 第19-22页 |
| 2.2.1 主要材料和试剂 | 第19页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第19-20页 |
| 2.2.3 丝素蛋白溶液的提取 | 第20页 |
| 2.2.4 II型胶原蛋白的提取 | 第20-21页 |
| 2.2.5 丝素蛋白和II型胶原蛋白质量分数测定 | 第21-22页 |
| 2.2.6 不同比例复合晾干膜的制备 | 第22页 |
| 2.3 实验方法 | 第22-24页 |
| 2.3.1 不同比例复合膜的单轴拉伸力学性能测试 | 第22-23页 |
| 2.3.2 SF70复合膜的蠕变力学行为 | 第23-24页 |
| 2.3.3 SF70复合膜的率相关行为 | 第24页 |
| 2.4 SF70复合膜的蠕变型本构模型 | 第24-27页 |
| 2.4.1 SF70复合膜蠕变型本构模型的建立 | 第24-25页 |
| 2.4.2 参数α,β和n的确定 | 第25-27页 |
| 2.5 结果和讨论 | 第27-29页 |
| 2.5.1 不同配比的复合晾干膜的拉伸力学性能 | 第27-28页 |
| 2.5.2 不同应力幅值下的蠕变行为 | 第28-29页 |
| 2.5.3 不同加载率下的拉伸力学性能 | 第29页 |
| 2.6 本章小结 | 第29-30页 |
| 第三章 丝素蛋白/II型胶原复合膜的生物相容性 | 第30-38页 |
| 3.1 引言 | 第30页 |
| 3.2 主要试剂和设备 | 第30-31页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第30-31页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第31页 |
| 3.3 主要方法 | 第31-33页 |
| 3.3.1 II型胶原-丝素复合冻干膜的制备 | 第31页 |
| 3.3.2 不同比例复合冻干膜吸水率和降解率 | 第31-32页 |
| 3.3.3 软骨细胞在复合膜上的接种 | 第32页 |
| 3.3.4 钙黄素活死细胞染色 | 第32页 |
| 3.3.5 SEM扫描电镜观察 | 第32页 |
| 3.3.6 MTT细胞增殖检测 | 第32-33页 |
| 3.3.7 统计学分析 | 第33页 |
| 3.4 结果和讨论 | 第33-37页 |
| 3.4.1 不同配比复合膜的表观物理性能 | 第33页 |
| 3.4.2 SEM观察 | 第33-34页 |
| 3.4.3 吸水膨胀率测试 | 第34页 |
| 3.4.4 降解性能的测试 | 第34-35页 |
| 3.4.5 双色荧光染色 | 第35-36页 |
| 3.4.6 MTT增殖检测 | 第36-37页 |
| 3.4.7 SEM观察 | 第37页 |
| 3.5 本章小结 | 第37-38页 |
| 第四章 压缩载荷下人工软骨的组织化培养 | 第38-53页 |
| 4.1 引言 | 第38页 |
| 4.2 主要原料和仪器 | 第38-41页 |
| 4.2.1 主要试剂 | 第38-39页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第39-40页 |
| 4.2.3 低温3D单通道打印复合支架 | 第40-41页 |
| 4.3 主要方法 | 第41-46页 |
| 4.3.1 软骨细胞在复合支架上的接种 | 第41-42页 |
| 4.3.2 梯度压缩载荷下复合支架的培养 | 第42页 |
| 4.3.3 MTT法检测细胞的增殖情况 | 第42-43页 |
| 4.3.4 复合支架组织化培养的最佳动态培养条件 | 第43页 |
| 4.3.5 MTT法检测增殖情况 | 第43页 |
| 4.3.6 扫描电镜观察复合支架 | 第43页 |
| 4.3.7 HE染色观察复合支架 | 第43-44页 |
| 4.3.8 Real-time PCR检测复合支架上的细胞Col II、Aggrecan、MMP-13 基因表达 | 第44-45页 |
| 4.3.9 Western Blot检测细胞Col II、Aggrecan蛋白表达 | 第45-46页 |
| 4.4 结果与分析 | 第46-51页 |
| 4.4.1 丝素蛋白/II型胶原复合支架的表观和微观结构 | 第46页 |
| 4.4.2 梯度应变下复合支架的MTT结果 | 第46-47页 |
| 4.4.3 最适压缩载荷下复合支架的MTT结果 | 第47页 |
| 4.4.4 扫描电镜下的复合支架 | 第47-48页 |
| 4.4.5 复合支架的HE染色 | 第48-49页 |
| 4.4.6 Real-time PCR检测复合支架上的细胞Col-II、Aggrecan、Mmp-13 基因表达 | 第49-50页 |
| 4.4.7 复合支架的Western Blot结果 | 第50-51页 |
| 4.5 本章小结 | 第51-53页 |
| 4.5.1 细胞培养的创新性与优势 | 第51-52页 |
| 4.5.2 复合支架生物相容性分析 | 第52-53页 |
| 第五章 软骨缺损的初步修复研究 | 第53-61页 |
| 5.1 引言 | 第53页 |
| 5.2 实验材料 | 第53-55页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第53-54页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第54页 |
| 5.2.3 主要液体的配置方法 | 第54-55页 |
| 5.3 主要方法 | 第55-57页 |
| 5.3.1 动物实验的分组 | 第55页 |
| 5.3.2 人工软骨支架的植入 | 第55-56页 |
| 5.3.3 修复区的组织的取材 | 第56页 |
| 5.3.4 大体观察 | 第56页 |
| 5.3.5 Micro-CT扫描观察 | 第56-57页 |
| 5.3.6 组织学及免疫组化染色观察 | 第57页 |
| 5.4 实验结果 | 第57-60页 |
| 5.4.1 大体观察 | 第57-58页 |
| 5.4.2 Micro-CT观察结果 | 第58-59页 |
| 5.4.3 组织学及免疫组化染色观察 | 第59-60页 |
| 5.5 本章小结 | 第60-61页 |
| 第六章 总结与展望 | 第61-63页 |
| 6.1 全文总结 | 第61-62页 |
| 6.2 展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-68页 |
| 发表论文和科研情况说明 | 第68-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
