| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 前言 | 第7-14页 |
| 材料与方法 | 第14-32页 |
| 1. 材料 | 第14-20页 |
| 1.1 小鼠模型 | 第14页 |
| 1.2 主要试剂 | 第14-15页 |
| 1.3 耗材 | 第15-16页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第16-18页 |
| 1.5 引物 | 第18-19页 |
| 1.6 主要仪器设备 | 第19-20页 |
| 1.7 抗体 | 第20页 |
| 2. 方法 | 第20-32页 |
| 2.1 小鼠基因型鉴定 | 第20-21页 |
| 2.2 组织蛋白的提取、浓度测定及Western-Blot分析 | 第21-23页 |
| 2.3 小动物核磁共振成像(Mico-MRI Image) | 第23页 |
| 2.4 H&E(Hematoxylin-Eosin)染色 | 第23页 |
| 2.5 免疫组织化学染色 | 第23-24页 |
| 2.6 组织免疫荧光分析 | 第24-25页 |
| 2.7 组织total RNA提取、Poly(A) RNA提取、Poly(A) RNA片段化及m~6A-IP | 第25-28页 |
| 2.8 m~6A-seq | 第28页 |
| 2.9 m~6A-IP qPCR | 第28-29页 |
| 2.10 组织核浆分离分析 | 第29-30页 |
| 2.11 生物信息学分析 | 第30-31页 |
| 2.12 统计学分析 | 第31-32页 |
| 实验结杲 | 第32-41页 |
| 1. m~6A甲基化酶和去甲基化酶在野生型小鼠小脑发育过程中的动态表达模式 | 第32页 |
| 2. Alkbh5敲除小鼠的小脑表型分析 | 第32-34页 |
| 3. 低压低氧刺激实验条件摸索 | 第34-35页 |
| 4. 低压低氧刺激后Alkbh5敲除小鼠小脑的早期表型分析 | 第35-36页 |
| 5. 低压低氧刺激后Alkbh5敲除小鼠小脑的后期表型分析 | 第36-37页 |
| 6. 低压低氧刺激的Alkbh5敲除小鼠小脑的m~6A甲基化谱分析 | 第37-39页 |
| 7. 低压低氧刺激的Alkbh5敲除小鼠小脑的RNA出核异常 | 第39-41页 |
| 讨论 | 第41-46页 |
| 总结 | 第46-48页 |
| 1. 本研究的主要结论 | 第46页 |
| 2. 本研究的创新性 | 第46页 |
| 3. 本研究的局限 | 第46-47页 |
| 4. 未来研究方向 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-55页 |
| 附录 | 第55-56页 |
| 综述 | 第56-76页 |
| 参考文献 | 第69-76页 |
| 个人简历 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
