| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-25页 |
| 1.1 海藻多糖概述 | 第11-13页 |
| 1.1.1 红藻多糖简介 | 第11-12页 |
| 1.1.2 绿藻多糖简介 | 第12页 |
| 1.1.3 褐藻多糖简介 | 第12-13页 |
| 1.2 海藻多糖提取方法 | 第13-14页 |
| 1.3 海藻多糖的生物活性 | 第14-18页 |
| 1.3.1 抗凝血活性 | 第15页 |
| 1.3.2 抗氧化活性 | 第15-16页 |
| 1.3.3 抗病毒活性 | 第16-17页 |
| 1.3.4 抗肿瘤活性 | 第17页 |
| 1.3.5 其他生物活性 | 第17-18页 |
| 1.4 低分子量海藻多糖概述 | 第18-19页 |
| 1.5 低分子量海藻多糖的制备方法 | 第19-21页 |
| 1.5.1 化学降解法 | 第19-20页 |
| 1.5.2 生物降解法 | 第20-21页 |
| 1.5.3 物理降解法 | 第21页 |
| 1.6 ALV-J概述 | 第21-23页 |
| 1.6.1 ALV-J的发现 | 第21-22页 |
| 1.6.2 ALV-J的结构特征 | 第22页 |
| 1.6.3 ALV-J对生产的影响 | 第22-23页 |
| 1.7 选题内容及意义 | 第23-25页 |
| 第二章 三类海藻多糖的制备、降解及理化性质分析 | 第25-50页 |
| 2.1 三种海藻多糖的制备 | 第25-27页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第25-26页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第26-27页 |
| 2.1.3 结果与讨论 | 第27页 |
| 2.2 海藻多糖的降解及低分子量海藻多糖的制备 | 第27-39页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第27-28页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第28页 |
| 2.2.3 结果与讨论 | 第28-39页 |
| 2.2.3.1 不同降解条件对蜈蚣藻多糖分子量的影响 | 第28-31页 |
| 2.2.3.2 不同降解条件对孔石莼多糖分子量的影响 | 第31-35页 |
| 2.2.3.3 不同降解条件对羊栖菜多糖分子量的影响 | 第35-38页 |
| 2.2.3.4 低分子量海藻多糖的制备 | 第38-39页 |
| 2.3 海藻多糖化学组成分析及结构测定 | 第39-49页 |
| 2.3.1 实验材料 | 第39-40页 |
| 2.3.2 实验方法 | 第40-43页 |
| 2.3.3 结果与讨论 | 第43-49页 |
| 2.3.3.1 不同分子量海藻多糖化学组成分析 | 第43-45页 |
| 2.3.3.2 单糖组成分析 | 第45-46页 |
| 2.3.3.3 红外光谱分析 | 第46-48页 |
| 2.3.3.4 核磁光谱分析 | 第48-49页 |
| 本章小结 | 第49-50页 |
| 第三章 三类低分子量海藻多糖体外抗ALV-J活性研究 | 第50-75页 |
| 3.1 实验材料 | 第50-51页 |
| 3.2 实验方法 | 第51-62页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第62-73页 |
| 3.3.1 细胞毒性检测 | 第62页 |
| 3.3.2 半数组织感染剂量测定 | 第62-65页 |
| 3.3.3 样品筛选实验结果分析 | 第65-66页 |
| 3.3.4 给药方式分析 | 第66-68页 |
| 3.3.5 荧光定量PCR检测病毒相对表达量 | 第68-71页 |
| 3.3.6 Western-blot实验 | 第71-72页 |
| 3.3.7 IFA测定结果 | 第72-73页 |
| 本章小结 | 第73-75页 |
| 第四章 不同分子量羊栖菜多糖抗ALV-J活性研究 | 第75-80页 |
| 4.1 实验材料 | 第75页 |
| 4.2 实验方法 | 第75页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第75-78页 |
| 4.3.1 Real-time PCR检测病毒相对表达量 | 第75-76页 |
| 4.3.2 Western-blot实验 | 第76-77页 |
| 4.3.3 IFA测定结果 | 第77-78页 |
| 本章小结 | 第78-80页 |
| 第五章 主要结论与创新点 | 第80-81页 |
| 5.1 主要结论 | 第80页 |
| 5.2 创新点 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
| 个人简介 | 第93页 |
| 获奖情况 | 第93页 |
| 所发论文情况 | 第93-94页 |
| 附图 | 第94-96页 |
