摘要 | 第3-6页 |
ABSTRACT | 第6-9页 |
符号说明 | 第12-13页 |
第一章 绪论 | 第13-15页 |
1.1 研究背景 | 第13-14页 |
1.2 立题依据 | 第14-15页 |
第二章 脂质体膜材的合成 | 第15-24页 |
2.1 仪器与材料 | 第15-16页 |
2.1.1 主要仪器 | 第15页 |
2.1.2 主要材料 | 第15-16页 |
2.2 方法和操作 | 第16-18页 |
2.2.1 DC-Chol和DMAPA-Chol的合成 | 第16-17页 |
2.2.2 DC-CHEMS和DMAPA-CHEMS的合成 | 第17-18页 |
2.3 结果和讨论 | 第18-23页 |
2.3.1 DC-Chol和DMAPA-Chol的合成 | 第18-20页 |
2.3.2 DC-CHEMS和DMAPA-CHEMS的合成 | 第20-23页 |
2.4 本章小结 | 第23-24页 |
第三章 阳离子胆固醇脂质体的构建及体外评价 | 第24-37页 |
3.1 仪器与材料 | 第24-25页 |
3.1.1 仪器 | 第24页 |
3.1.2 材料 | 第24-25页 |
3.2 实验方法 | 第25-28页 |
3.2.1 阳离子胆固醇脂质体的制备与表征 | 第25页 |
3.2.2 脂质体与pDNA结合率以及保护DNA能力的测定 | 第25-26页 |
3.2.3 脂质体的细胞溶血实验 | 第26页 |
3.2.4 脂质体的细胞毒性测定 | 第26-27页 |
3.2.5 脂质体对细胞摄取F-ODN的促进作用 | 第27页 |
3.2.6 脂质体的基因转染效果 | 第27-28页 |
3.3 结果与讨论 | 第28-36页 |
3.3.1 阳离子胆固醇脂质体的表征 | 第28-29页 |
3.3.2 脂质体与pDNA的结合率及保护DNA能力 | 第29-31页 |
3.3.3 细胞溶血实验 | 第31页 |
3.3.4 脂质体的细胞毒性 | 第31-32页 |
3.3.5 脂质体对F-ODN细胞摄取的促进作用 | 第32-34页 |
3.3.6 脂质体的基因转染效果 | 第34-36页 |
3.4 本章小结 | 第36-37页 |
第四章 八聚精氨酸介导的脂质体复合物的制备及体外评价 | 第37-45页 |
4.1 仪器和材料 | 第37-38页 |
4.1.1 仪器 | 第37页 |
4.1.2 材料 | 第37-38页 |
4.2 方法和操作 | 第38-39页 |
4.2.1 载体与pDNA的结合率 | 第38页 |
4.2.2 含R8脂质体的细胞毒性研究 | 第38页 |
4.2.3 含R8脂质体的细胞摄取F-ODN的研究 | 第38-39页 |
4.2.4 含R8脂质体的细胞转染 | 第39页 |
4.3 实验结果 | 第39-44页 |
4.3.1 载体与pDNA的结合率 | 第39-40页 |
4.3.2 含R8脂质体的细胞毒性研究 | 第40-41页 |
4.3.3 R8对细胞摄取F-ODN的促进作用 | 第41-42页 |
4.3.4 含R8脂质体的细胞转染作用 | 第42-44页 |
4.4 本章小结 | 第44-45页 |
第五章 含DOPE与R8的阳离子脂质体的构建及体外评价 | 第45-54页 |
5.1 仪器与材料 | 第45-46页 |
5.1.1 仪器 | 第45页 |
5.1.2 材料 | 第45-46页 |
5.2 实验方法 | 第46-48页 |
5.2.1 含DOPE脂质体的制备与表征 | 第46页 |
5.2.2 含DOPE脂质体以及加入R8后的复合物的细胞转染 | 第46-47页 |
5.2.3 胞内分布考察 | 第47页 |
5.2.4 WesternBlot检测survivin蛋白的表达 | 第47-48页 |
5.2.4.1 ODN的胞内转染 | 第47页 |
5.2.4.2 survivin蛋白样品的提取 | 第47页 |
5.2.4.3 蛋白浓度的测定与标定 | 第47-48页 |
5.2.4.4 Western Blot | 第48页 |
5.3 实验结果 | 第48-52页 |
5.3.1 含DOPE脂质体的粒径与电位 | 第48-49页 |
5.3.2 含DOPE脂质体以及加入R8后复合物的细胞转染 | 第49-51页 |
5.3.3 胞内分布 | 第51-52页 |
5.3.4 Western blot | 第52页 |
5.4 本章总结 | 第52-54页 |
全文总结 | 第54-56页 |
参考文献 | 第56-59页 |
综述 | 第59-74页 |
参考文献 | 第71-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第75页 |