摘要 | 第6-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
缩写词索引 | 第12-24页 |
第一章 绪论 | 第24-46页 |
1.1 吗啡成瘾概述 | 第24-29页 |
1.1.1 吗啡成瘾 | 第24-25页 |
1.1.2 吗啡成瘾作用机理 | 第25页 |
1.1.3 吗啡成瘾与相关脑区 | 第25-29页 |
1.1.4 吗啡成瘾的相关治疗 | 第29页 |
1.2 吗啡成瘾与阿片类受体 | 第29-31页 |
1.2.1 吗啡成瘾与μ受体 | 第29-30页 |
1.2.2 吗啡成瘾与κ受体 | 第30页 |
1.2.3 吗啡成瘾与δ受体 | 第30-31页 |
1.3 吗啡成瘾与转录因子 | 第31页 |
1.4 吗啡成瘾与多巴胺能系统 | 第31-33页 |
1.5 吗啡成瘾与谷氨酸能系统 | 第33-34页 |
1.6 吗啡成瘾与γ-氨基丁酸能系统 | 第34-35页 |
1.7 硫氧还蛋白-1 | 第35-43页 |
1.7.1 硫氧还蛋白-1的概述 | 第35-36页 |
1.7.2 硫氧还蛋白-1的结构 | 第36-37页 |
1.7.3 硫氧还蛋白-1的功能 | 第37-43页 |
1.8 本论文研究目的,研究意义,技术路线和创新之处 | 第43-46页 |
1.8.1 研究意义 | 第43-44页 |
1.8.2 研究目的 | 第44页 |
1.8.3 技术路线 | 第44-45页 |
1.8.4 特色与创新之处 | 第45-46页 |
第二章 硫氧还蛋白-1对吗啡诱导的小鼠位置偏好的抵抗作用 | 第46-75页 |
2.1 引言 | 第46-47页 |
2.2 实验方案 | 第47页 |
2.3 实验材料 | 第47-56页 |
2.3.1 实验动物 | 第47-48页 |
2.3.2 实验装置 | 第48-49页 |
2.3.3 实验试剂 | 第49-52页 |
2.3.4 各种实验试剂的配制 | 第52-56页 |
2.4 实验步骤和方法 | 第56-64页 |
2.4.1 野生型小鼠和转基因小鼠条件性位置偏好的检测 | 第56-57页 |
2.4.2 野生型小鼠和转基因小鼠各脑区组织的提取 | 第57页 |
2.4.3 野生型小鼠和转基因小鼠组织蛋白的提取 | 第57-58页 |
2.4.4 蛋白质免疫印迹(WesternBlot) | 第58-60页 |
2.4.5 细胞的培养 | 第60-61页 |
2.4.6 组织中RNA的提取 | 第61页 |
2.4.7 RNA逆转录成cDNA | 第61-62页 |
2.4.8 Real-TimePCR | 第62-63页 |
2.4.9 统计学分析 | 第63-64页 |
2.5 结果与分析 | 第64-72页 |
2.5.1 硫氧还蛋白-1转基因高表达小鼠抵抗吗啡诱导的小鼠的位置偏好 | 第64-65页 |
2.5.2 吗啡诱导的位置偏好对小鼠Trx-1表达的影响 | 第65-72页 |
2.6 讨论 | 第72-75页 |
第三章 硫氧还蛋白-1对μ受体的调节作用 | 第75-85页 |
3.1 引言 | 第75页 |
3.2 实验方案 | 第75-76页 |
3.3 实验材料 | 第76-77页 |
3.3.1 实验动物 | 第76页 |
3.3.2 实验细胞株 | 第76页 |
3.3.3 实验装置 | 第76-77页 |
3.3.4 实验试剂 | 第77页 |
3.4 实验步骤和方法 | 第77-79页 |
3.4.1 细胞培养溶液的配制 | 第77-78页 |
3.4.2 细胞的培养 | 第78-79页 |
3.4.3 野生型小鼠和转基因小鼠条件性位置偏好的检测 | 第79页 |
3.4.4 蛋白质免疫印迹(Western Blot) | 第79页 |
3.5 结果与分析 | 第79-83页 |
3.5.1 吗啡诱导的位置偏好对小鼠VTA区μ受体的影响 | 第79-80页 |
3.5.2 纳曲酮,吗啡,双氧水刺激PC12细胞对Trx-1和μ受体的影响 | 第80-81页 |
3.5.3 二硫苏糖醇和吗啡刺激PC12细胞对Trx-1和μ受体的影响 | 第81-83页 |
3.6 讨论 | 第83-85页 |
第四章 硫氧还蛋白-1对转录因子的调节作用 | 第85-97页 |
4.1 引言 | 第85页 |
4.2 实验方案 | 第85-86页 |
4.3 实验材料 | 第86页 |
4.3.1 实验动物 | 第86页 |
4.3.2 实验装置 | 第86页 |
4.3.3 实验试剂 | 第86页 |
4.4 实验步骤和方法 | 第86页 |
4.4.1 野生型小鼠和转基因小鼠条件性位置偏好的检测 | 第86页 |
4.4.2 蛋白质免疫印迹(Western Blot) | 第86页 |
4.5 结果与分析 | 第86-95页 |
4.5.1 吗啡诱导的位置偏好对VTA区转录因子的影响 | 第86-89页 |
4.5.2 吗啡诱导的位置偏好对NAc区转录因子的影响 | 第89-92页 |
4.5.3 吗啡诱导的位置偏好对Hip区转录因子的影响 | 第92-93页 |
4.5.4 吗啡诱导的位置偏好对PFC区转录因子的影响 | 第93-95页 |
4.6 讨论 | 第95-97页 |
第五章 硫氧还蛋白-1对多巴胺系统的调节作用 | 第97-108页 |
5.1 引言 | 第97页 |
5.2 实验方案 | 第97-98页 |
5.3 实验材料 | 第98页 |
5.3.1 实验动物 | 第98页 |
5.3.2 实验装置 | 第98页 |
5.3.3 实验试剂 | 第98页 |
5.4 实验步骤和方法 | 第98页 |
5.4.1 野生型小鼠和转基因小鼠条件性位置偏好的检测 | 第98页 |
5.4.2 蛋白质免疫印迹(Western Blot) | 第98页 |
5.5 结果与分析 | 第98-106页 |
5.5.1 吗啡诱导的位置偏好对VTA区多巴胺能系统的影响 | 第98-100页 |
5.5.2 吗啡诱导的位置偏好对NAc区多巴胺能系统的影响 | 第100-103页 |
5.5.3 吗啡诱导的位置偏好对Hip区多巴胺能系统的影响 | 第103-104页 |
5.5.4 吗啡诱导的位置偏好对PFC区多巴胺能系统的影响 | 第104-106页 |
5.6 讨论 | 第106-108页 |
第六章 硫氧还蛋白-1对谷氨酸系统的调节作用 | 第108-121页 |
6.1 引言 | 第108页 |
6.2 实验方案 | 第108-109页 |
6.3 实验材料 | 第109页 |
6.3.1 实验动物 | 第109页 |
6.3.2 电镜观察小鼠VTA区突触变化 | 第109页 |
6.3.3 实验装置 | 第109页 |
6.3.4 实验试剂 | 第109页 |
6.4 实验步骤和方法 | 第109-110页 |
6.4.1 野生型小鼠和转基因小鼠条件性位置偏好的检测 | 第109页 |
6.4.2 蛋白质免疫印迹(Western Blot) | 第109-110页 |
6.5 结果与分析 | 第110-118页 |
6.5.1 吗啡诱导的位置偏好对VTA区谷氨酸能系统的影响 | 第110-112页 |
6.5.2 吗啡诱导的位置偏好对VTA区PSD-95的影响 | 第112页 |
6.5.3 吗啡诱导的位置偏好对VTA区突触的影响 | 第112-114页 |
6.5.4 吗啡诱导的位置偏好对NAc区谷氨酸能系统的影响 | 第114-116页 |
6.5.5 吗啡诱导的位置偏好对Hip区谷氨酸能系统的影响 | 第116-118页 |
6.5.6 吗啡诱导的位置偏好对PFC区谷氨酸能系统的影响 | 第118页 |
6.6 讨论 | 第118-121页 |
第七章 硫氧还蛋白-1对γ-氨基丁酸系统调节作用 | 第121-129页 |
7.1 引言 | 第121页 |
7.2 实验方案 | 第121页 |
7.3 实验材料 | 第121-123页 |
7.3.1 实验动物 | 第121-122页 |
7.3.2 实验装置 | 第122页 |
7.3.3 高效液相层析检测神经递质浓度 | 第122页 |
7.3.4 实验试剂 | 第122-123页 |
7.4 实验步骤和方法 | 第123页 |
7.4.1 野生型小鼠和转基因小鼠条件性位置偏好的检测 | 第123页 |
7.4.2 蛋白质免疫印迹(Western Blot) | 第123页 |
7.5 结果与分析 | 第123-127页 |
7.5.1 吗啡诱导的位置偏好对VTA区γ-氨基丁酸能系统的影响 | 第123-124页 |
7.5.2 吗啡诱导的位置偏好对NAc区γ-氨基丁酸能系统的影响 | 第124-125页 |
7.5.3 吗啡诱导的位置偏好对Hip区γ-氨基丁酸能系统的影响 | 第125页 |
7.5.4 吗啡诱导的位置偏好对PFC区γ-氨基丁酸能系统的影响 | 第125-126页 |
7.5.5 吗啡诱导的位置偏好对VTA区和NAc区γ-氨基丁酸浓度的影响 | 第126-127页 |
7.6 讨论 | 第127-129页 |
第八章 总结与展望 | 第129-132页 |
8.1 总结 | 第129-131页 |
8.2 展望 | 第131-132页 |
致谢 | 第132-134页 |
参考文献 | 第134-160页 |
附录 A | 第160-162页 |
附录 B | 第162页 |