| 学位论文数据集 | 第3-4页 |
| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 符号和缩略词说明 | 第17-18页 |
| 第一部分 氧化石墨烯包覆对Hela细胞抵御有机溶剂压力的作用 | 第18-48页 |
| 第一章 绪论 | 第18-22页 |
| 1.1 石墨烯简介 | 第18-19页 |
| 1.2 石墨烯与细胞的相互作用 | 第19页 |
| 1.3 有机溶剂在医药中的使用及毒性 | 第19-20页 |
| 1.4 纳米材料对细胞的包覆和保护 | 第20-21页 |
| 1.5 论文的目的与意义 | 第21-22页 |
| 第二章 实验部分 | 第22-26页 |
| 2.1 细胞培养 | 第22-23页 |
| 2.1.1 细胞的复苏 | 第22页 |
| 2.1.2 细胞的传代 | 第22-23页 |
| 2.1.3 细胞的冻存 | 第23页 |
| 2.1.4 PBS(磷酸缓冲溶液)配制 | 第23页 |
| 2.2 氧化石墨烯的表征 | 第23页 |
| 2.2.1 SEM制样步骤 | 第23页 |
| 2.2.2 TEM制样步骤 | 第23页 |
| 2.3 细胞毒性的检测 | 第23-24页 |
| 2.3.1 氧化石墨烯的安全剂量 | 第23-24页 |
| 2.3.2 Hela@GO在有机溶剂中的细胞活性 | 第24页 |
| 2.4 Hela@GO的形态观察 | 第24页 |
| 2.4.1 Hela@GO光学显微镜观察 | 第24页 |
| 2.5 细胞膜完整性检测 | 第24-25页 |
| 2.6 细胞内活性氧水平检测 | 第25页 |
| 2.7 细胞凋亡检测 | 第25-26页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第26-46页 |
| 3.1 氧化石墨烯的表征 | 第26页 |
| 3.2 CCK-8实验结果与分析 | 第26-31页 |
| 3.2.1 GO细胞毒性检测结果分析 | 第26-27页 |
| 3.2.2 Hela@GO在DMSO中细胞活性检测结果分析 | 第27-28页 |
| 3.2.3 Hela@GO在乙醇中的细胞活性检测结果分析 | 第28-29页 |
| 3.2.4 Hela@GO在丙酮中的细胞活性检测结果分析 | 第29-30页 |
| 3.2.5 Hela@GO在丙三醇中的细胞活性检测结果分析 | 第30-31页 |
| 3.3 Hela@GO细胞形态观察 | 第31-32页 |
| 3.4 LDH实验结果与分析 | 第32-36页 |
| 3.4.1 Hela@GO在DMSO中膜完整性检测 | 第32-33页 |
| 3.4.2 Hela@GO在乙醇中膜完整性检测 | 第33-34页 |
| 3.4.3 Hela@GO在丙酮中膜完整性检测 | 第34-35页 |
| 3.4.4 Hela@GO在丙三醇中膜完整性检测 | 第35-36页 |
| 3.5 ROS实验结果与分析 | 第36-40页 |
| 3.5.1 Hela@GO在DMSO中活性氧的检测 | 第36-37页 |
| 3.5.2 Hela@GO在乙醇中活性氧的检测 | 第37-38页 |
| 3.5.3 Hela@GO在丙酮中活性氧的检测 | 第38-39页 |
| 3.5.4 Hela@GO在丙三醇中活性氧的检测 | 第39-40页 |
| 3.6 Caspase3/7实验结果与分析 | 第40-44页 |
| 3.6.1 Hela@GO在DMSO中细胞凋亡检测 | 第40-41页 |
| 3.6.2 Hela@GO在乙醇中细胞凋亡检测 | 第41-42页 |
| 3.6.3 Hela细胞在丙酮中细胞凋亡检测 | 第42-43页 |
| 3.6.4 Hela细胞在丙三醇中细胞凋亡检测 | 第43-44页 |
| 3.7 数据分析与总结 | 第44-45页 |
| 3.8 数据统计 | 第45-46页 |
| 第四章 总结与展望 | 第46-48页 |
| 第二部分 碳点在大鼠骨髓间充质干细胞内的分布和成像研究 | 第48-74页 |
| 第五章 绪论 | 第48-54页 |
| 5.1 前言 | 第48-49页 |
| 5.2 间充质干细胞(MSCs)的简介及应用 | 第49页 |
| 5.3 细胞标记技术简介 | 第49-50页 |
| 5.4 干细胞体内标记 | 第50-51页 |
| 5.5 量子点的简介与应用 | 第51-52页 |
| 5.6 碳量子点的简介 | 第52页 |
| 5.7 论文的目的与意义 | 第52-54页 |
| 第六章 实验部分 | 第54-60页 |
| 6.1 碳点的细胞毒性检测 | 第54页 |
| 6.2 CDs标记MSCs细胞的短期成像 | 第54-56页 |
| 6.2.1 CDs在MSCs中的成像 | 第54页 |
| 6.2.2 CDs与细胞核在MSCs中的共定位成像 | 第54-55页 |
| 6.2.3 CDs与线粒体在MSCs中的共定位成像 | 第55页 |
| 6.2.3.1 储存液的配制 | 第55页 |
| 6.2.3.2 线粒体荧光探针工作液的配制 | 第55页 |
| 6.2.3.3 染色步骤 | 第55页 |
| 6.2.4 CDs与脂滴在MSCs中的共定位成像 | 第55页 |
| 6.2.5 CDs与内体在MSCs中的共定位成像 | 第55-56页 |
| 6.2.6 CDs与溶酶体在MSCs中的共定位成像 | 第56页 |
| 6.3 MSCs成骨诱导 | 第56-57页 |
| 6.3.1 大鼠骨髓间充质干细胞成骨分化 | 第56-57页 |
| 6.3.1.1 成骨诱导分化完全培养基的配制 | 第56页 |
| 6.3.1.2 明胶包被培养器皿表面 | 第56-57页 |
| 6.3.1.3 成骨诱导分化操作规程 | 第57页 |
| 6.3.2 茜素红染色 | 第57页 |
| 6.4 CDs@MSCs诱导后的成像 | 第57-58页 |
| 6.4.1 CDs@MSCs成骨分化后与细胞核在MSCs中的共定位成像 | 第57页 |
| 6.4.2 CDs@MSCs成骨分化后与线粒体在MSCs中的共定位成像 | 第57页 |
| 6.4.3 CDs@MSCs成骨分化后与溶酶体在MSCs中的共定位成像 | 第57-58页 |
| 6.4.3.1 CDs@MSCs成骨分化后与绿色溶酶体探针的共定位成像 | 第57-58页 |
| 6.4.3.2 CDs@MSCs成骨分化后与蓝色溶酶体探针的共定位成像 | 第58页 |
| 6.5 CDs在MSCs成骨分化后细胞中的成像 | 第58-60页 |
| 第七章 结果与讨论 | 第60-72页 |
| 7.1 碳点的细胞毒性检测结果 | 第60-61页 |
| 7.1.1 碳点的MSCs细胞毒性检测 | 第60页 |
| 7.1.2 碳点在MC3T3和Hela细胞中的细胞毒性检测 | 第60-61页 |
| 7.2 CDs的短期成像 | 第61-65页 |
| 7.2.1 CDs在MSCs中的成像 | 第62页 |
| 7.2.2 CDs与细胞核在MSCs中的共定位成像 | 第62-63页 |
| 7.2.3 CDs与线粒体在MSCs中的共定位成像 | 第63页 |
| 7.2.4 CDs与脂滴在MSCs中的共定位成像 | 第63-64页 |
| 7.2.5 CDs与内体在MSCs中的共定位成像 | 第64-65页 |
| 7.2.6 CDs与溶酶体在MSCs中的共定位成像 | 第65页 |
| 7.3 MSCs成骨诱导 | 第65-67页 |
| 7.3.1 光学显微镜结果 | 第65-66页 |
| 7.3.2 茜素红染色 | 第66-67页 |
| 7.4 CDs@MSC的诱导和成像 | 第67-70页 |
| 7.4.1 CDs@MSCs成骨分化后与细胞核的共定位成像 | 第67-68页 |
| 7.4.2 CDs@MSCs成骨分化后与线粒体的共定位成像 | 第68-69页 |
| 7.4.3 CDs@MSCs成骨分化后与溶酶体的共定位成像 | 第69-70页 |
| 7.4.3.1 CDs@MSCs成骨分化后与绿色溶酶体探针的共定位成像 | 第69页 |
| 7.4.3.2 CDs@MSCs成骨分化后与蓝色溶酶体探针的共定位成像 | 第69-70页 |
| 7.5 CDs在MSCs成骨分化后的细胞中的成像 | 第70-72页 |
| 7.5.1 CDs与线粒体在MSCs成骨分化后细胞中的共定位成像 | 第70-71页 |
| 7.5.2 CDs与溶酶体在MSCs成骨分化后细胞中的共定位成像 | 第71-72页 |
| 第八章 总结与展望 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-82页 |
| 致谢 | 第82-84页 |
| 研究成果和发表的学术论文目录 | 第84-86页 |
| 作者和导师简介 | 第86-87页 |
| 附件 | 第87-88页 |
