| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-23页 |
| 1 BmCPV的结构片段功能研究 | 第11-12页 |
| 2 RNA病毒的反向遗传学研究 | 第12-15页 |
| 2.1 RNA病毒反向遗传学的概念 | 第12-13页 |
| 2.2 RNA病毒反向遗传学的主要操作方法 | 第13页 |
| 2.3 呼肠孤病毒的反向遗传学研究进展 | 第13-15页 |
| 3 禽流感疫苗的研究进展 | 第15-16页 |
| 4 杆状病毒表达系统 | 第16-17页 |
| 4.1 Bac-to-Bac杆状病毒表达系统 | 第16页 |
| 4.2 家蚕杆状病毒表达系统 | 第16-17页 |
| 5 研究目的与内容 | 第17-19页 |
| 5.1 研究目的与意义 | 第17页 |
| 5.2 研究的主要内容 | 第17-18页 |
| 5.3 技术路线 | 第18-19页 |
| 参考文献 | 第19-23页 |
| 第二章 基于质粒的BmCPV反向遗传学系统构建 | 第23-42页 |
| 1.材料与方法 | 第24-30页 |
| 1.1 实验材料 | 第24-25页 |
| 1.2 常用仪器 | 第25页 |
| 1.3 实验方法 | 第25-30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-37页 |
| 2.1 稳定表达T_7RNA聚合酶的BmN细胞系BmT_7的构建 | 第30-31页 |
| 2.2 BmCPV10个基因组片段及pIZT-CS10-BT质粒的线性化 | 第31页 |
| 2.3 线性化质粒共转染BmT_7制备重组病毒 | 第31-32页 |
| 2.4 Westernblotting鉴定 | 第32页 |
| 2.5 细胞免疫荧光鉴定 | 第32-33页 |
| 2.6 rBmCPV在BmN细胞中的增殖曲线 | 第33-34页 |
| 2.7 rBmCPV感染家蚕后中肠的病理变化 | 第34页 |
| 2.8 Real-timePCR检测BmCPV家蚕中肠中病毒基因转录 | 第34-35页 |
| 2.9 rBmCPV多角体基因组检测 | 第35-36页 |
| 2.10 线性化质粒共转染BmT_7制备重组病毒rBmCPV-Bt及免疫荧光鉴定 | 第36-37页 |
| 3 讨论 | 第37-40页 |
| 参考文献 | 第40-42页 |
| 第三章 AIV多抗原表位疫苗的效果评估 | 第42-64页 |
| 1 材料与方法 | 第43-48页 |
| 1.1 实验材料及常用仪器 | 第43-44页 |
| 1.2 实验方法 | 第44-48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-61页 |
| 2.1 重组杆状病毒感染BmN细胞的形态变化 | 第48-49页 |
| 2.2 PCR重组杆状病毒 | 第49-50页 |
| 2.3 SDS-PAGE及WesternBlot检测CTLT在重组杆状病毒感染BmN细胞中的表达 | 第50-51页 |
| 2.4 免疫荧光检测CTLT在重组杆状病毒感染的BmN细胞细胞中的表达 | 第51-52页 |
| 2.5 PCR检测进入293t细胞的重组杆状病毒 | 第52-54页 |
| 2.6 THB在重组杆状病毒在293T细胞中的表达时相 | 第54页 |
| 2.7 免疫荧光检测THB在重组杆状病毒感染的293t细胞中的表达 | 第54-55页 |
| 2.8 重组杆状病毒免疫鸡后的鸡脾脏免疫组化 | 第55-57页 |
| 2.9 重组病毒免疫鸡后鸡血清中流感病毒H7抗体检测 | 第57-58页 |
| 2.10 鸡脾脏T淋巴细胞增殖反应 | 第58页 |
| 2.11 重组病毒免疫SPF级Balb/c小鼠后小鼠血清中流感病毒HA抗体水平 | 第58-59页 |
| 2.12 重组病毒免疫SPF级Balb/c小鼠后小鼠全血数据分析 | 第59-60页 |
| 2.13 重组杆状病毒免疫小鼠后的鼠脏器系数及脾脏免疫组化 | 第60-61页 |
| 3 讨论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-64页 |
| 结论 | 第64-65页 |
| 1 已取得的成果 | 第64页 |
| 2 有待进行的研究 | 第64-65页 |
| 附件 | 第65-75页 |
| 一、缩略词表 | 第65-66页 |
| 二、实验所用载体图谱 | 第66-67页 |
| 三、实验原始数据 | 第67-75页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第75-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
