| 摘要 | 第5-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 第一章 综述 | 第16-23页 |
| 1 糖尿病及其机制 | 第16-17页 |
| 1.1 糖尿病 | 第16页 |
| 1.2 T2DM | 第16-17页 |
| 2 广西巴马小型猪T2DM模型 | 第17-18页 |
| 2.1 糖尿病模型的发展 | 第18页 |
| 2.2 小型猪是理想的制作T2DM疾病模型动物 | 第18页 |
| 3 T2DM相关基因的研究进展 | 第18-22页 |
| 3.1 过氧化物酶体增殖物激活受体γ(PPARγ) | 第19-20页 |
| 3.2 肿瘤坏死因子(Tumor Necrosis factor alpha,TNF-α) | 第20页 |
| 3.3 孤儿核受体NR4A3(Nor-1) | 第20-21页 |
| 3.4 肥胖基因(obese gene) | 第21-22页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第22-23页 |
| 第二章 实验研究 | 第23-61页 |
| 1 实验材料 | 第23-24页 |
| 1.1 材料来源 | 第23页 |
| 1.2 主要试剂 | 第23-24页 |
| 2 实验仪器 | 第24-25页 |
| 3 溶液和培养基的配制 | 第25-27页 |
| 实验一 广西巴马小型猪T2DM疾病模型建立 | 第27-39页 |
| 1. 方法 | 第27-29页 |
| 1.1 选择实验动物 | 第27页 |
| 1.2 模型制作 | 第27-28页 |
| 1.3 静脉葡萄糖耐量试验(IVGTT) | 第28页 |
| 1.4 切片检查 | 第28页 |
| 1.5 数据处理 | 第28-29页 |
| 2. 结果 | 第29-37页 |
| 2.1 实验猪相关指标分析 | 第29-31页 |
| 2.2 建模成功率 | 第31-32页 |
| 2.3 T2DM猪与正常猪糖代谢相关指标的差异性比较 | 第32-34页 |
| 2.4 T2DM猪部分组织及切片的变化 | 第34-37页 |
| 3. 讨论 | 第37-39页 |
| 实验二 广西巴马小型猪PPARγ-2基因第2外显子SNP与T2DM易感性的相关分析 | 第39-48页 |
| 1. 实验材料和方法 | 第39-41页 |
| 1.1 实验材料 | 第39页 |
| 1.2 实验方法 | 第39-41页 |
| 2. 结果 | 第41-46页 |
| 2.1 基因组DNA提取结果 | 第41页 |
| 2.2 PCR扩增与检测结果 | 第41-43页 |
| 2.3 RFLP酶切结果及分析 | 第43-44页 |
| 2.4 PPARγ-2 19813A/G位点相同基因型个体交配繁育后代的结果分析 | 第44-45页 |
| 2.5 PPARγ-2 19813A/G位点基因型与基因在T2DM组和正常组的分布频率比较 | 第45-46页 |
| 2.6 PPARγ-2基因19813A/G多态性与糖代谢各相关指标的相关性分析 | 第46页 |
| 3. 讨论 | 第46-48页 |
| 实验三 广西巴马小型猪TNF-α,Leptin和Nor-1基因SNP检测及与T2DM易感性相关分析 | 第48-61页 |
| 1. 实验方法 | 第48-50页 |
| 1.1 血样采集 | 第48页 |
| 1.2 血液基因组DNA抽提(离心柱法) | 第48-49页 |
| 1.3 引物设计 | 第49-50页 |
| 1.4 目的片段PCR扩增与检测 | 第50页 |
| 1.5 TNF-α、Leptin和Nor-1基因多态位点与T2DM相关分析 | 第50页 |
| 2. 结果 | 第50-59页 |
| 2.1 基因组DNA提取 | 第50页 |
| 2.2 PCR扩增检测结果与多态性分析 | 第50-54页 |
| 2.3 Leptin基因881G/A位点与T2DM的相关性分析 | 第54-55页 |
| 2.4 Leptin基因881G/A SNP位点与糖代谢各指标的相关性分析 | 第55-56页 |
| 2.5 PPARγ-2基因19813A/G位点和Leptin基因881G/A位点二联组合与T2DM易感性的相关分析 | 第56-59页 |
| 3. 讨论 | 第59-61页 |
| 全文总结 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-68页 |
| 附录一 | 第68-69页 |
| 附录二 | 第69-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第79页 |
