| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 中英文缩略表 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-19页 |
| 1.1 研究背景 | 第13-14页 |
| 1.2 细胞微载体培养 | 第14-17页 |
| 1.3 IGF-1及DOPA-IGF1研究进展 | 第17-19页 |
| 第2章 兔骨髓间充质干细胞(RBMSCS)的分离、培养及鉴定 | 第19-27页 |
| 2.1 实验材料、主要实验仪器及试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.1 细胞来源 | 第19页 |
| 2.1.2 主要实验仪器与试剂 | 第19-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 主要试剂的配置 | 第20-21页 |
| 2.2.2 rBMSCs的分离及培养 | 第21-22页 |
| 2.2.3 绘制细胞生长曲线 | 第22页 |
| 2.2.4 成骨诱导分化 | 第22-23页 |
| 2.2.5 成脂诱导分化 | 第23页 |
| 2.3 实验结果 | 第23-27页 |
| 2.3.1 rBMSCs的分离培养 | 第23-24页 |
| 2.3.2 细胞的生长曲线 | 第24-25页 |
| 2.3.3 成骨诱导分化检测 | 第25-26页 |
| 2.3.4 成脂诱导分化检测 | 第26-27页 |
| 第3章 DOPA-IGF1的蛋白表达、纯化及检测 | 第27-32页 |
| 概述 | 第27-32页 |
| 3.1 实验材料、主要实验仪器及试剂 | 第27-29页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第27-28页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第28-29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-30页 |
| 3.2.1 基因载体构建原理 | 第29页 |
| 3.2.2 蛋白表达和纯化 | 第29-30页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第30-32页 |
| 3.3.1 DOPA-IGF1蛋白表达和纯化 | 第30-32页 |
| 第4章 不同成分构成的细胞微载体的制备 | 第32-38页 |
| 概述 | 第32-38页 |
| 4.1 实验材料、主要实验仪器及试剂 | 第32页 |
| 4.2 实验方法 | 第32-35页 |
| 4.2.1 PLGA细胞微载体的制备 | 第32-33页 |
| 4.2.2 不同电压下制备细胞微载体 | 第33-34页 |
| 4.2.3 不同距离下制备细胞微载体 | 第34页 |
| 4.2.4 不同针头内径制备细胞微载体 | 第34页 |
| 4.2.5 不同PLGA与HA比例制备细胞微载体 | 第34-35页 |
| 4.3 实验结果 | 第35-38页 |
| 4.3.1 不同电压下制备细胞微载体 | 第35页 |
| 4.3.2 不同距离下制备细胞微载体 | 第35-36页 |
| 4.3.3 不同针头内径制备细胞微载体 | 第36-38页 |
| 第5章 结合有DOPA-IGF1的细胞微载体对RBMSCS的增殖与成骨分化的影响 | 第38-49页 |
| 5.1 实验材料、主要实验仪器及试剂 | 第38-39页 |
| 5.1.1 实验材料与主要仪器 | 第38页 |
| 5.1.2 主要试剂的配制 | 第38-39页 |
| 5.2 实验方法 | 第39-43页 |
| 5.2.1 共培养后增值活性测定 | 第39页 |
| 5.2.2 共培养成骨后碱性磷酸酶测定 | 第39-40页 |
| 5.2.3 共培养成骨后总RNA提取及浓度测定 | 第40-41页 |
| 5.2.4 共培养成骨后成骨相关基因检测 | 第41-43页 |
| 5.3 统计学分析 | 第43页 |
| 5.4 实验结果 | 第43-49页 |
| 5.4.1 与微载体共培养后形态荧光染色 | 第43-44页 |
| 5.4.2 与微载体共培养后rBMSCs增殖活性 | 第44页 |
| 5.4.3 与微载体共培养后rBMSCsALP检测 | 第44-45页 |
| 5.4.4 与微载体共培养后rBMSCs成骨相关基因检测 | 第45-46页 |
| 5.4.5 与结合有生长因子的细胞微载体共培养后rBMSCsALP检测 | 第46-47页 |
| 5.4.6 与结合有生长因子的细胞微载体共培养后rBMSCs成骨相关基因检测 | 第47-49页 |
| 第6章 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-57页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
