南方鲇(Silurus meridionalis Chen)性腺体细胞系的建立、鉴定及应用
目录 | 第5-7页 |
摘要 | 第7-10页 |
ABSTRACT | 第10-13页 |
缩略词表 | 第14-15页 |
第一章 文献综述 | 第15-27页 |
1. 鱼类细胞培养研究进展及应用 | 第15-21页 |
1.1. 鱼类细胞培养研究进展 | 第15-18页 |
1.2. 鱼类细胞系的应用 | 第18-21页 |
2. 环境雌激素检测 | 第21-25页 |
2.1. 环境雌激素 | 第22页 |
2.2. 环境雌激素的危害 | 第22-24页 |
2.3. 环境雌激素检测方法 | 第24-25页 |
3. 本论文研究的目的和意义 | 第25-27页 |
第二章 南方鲇卵巢细胞系的建立及生物学特征 | 第27-41页 |
1. 材料与方法 | 第27-34页 |
1.1. 实验动物 | 第27页 |
1.2. 实验试剂 | 第27页 |
1.3. 实验溶液配置方法 | 第27-28页 |
1.4. 实验仪器 | 第28-29页 |
1.5. 原代培养 | 第29页 |
1.6. 最适生长条件的确定 | 第29-30页 |
1.7. 传代培养 | 第30页 |
1.8. 细胞系的冻存和复苏 | 第30-31页 |
1.9. 分子表达 | 第31-33页 |
1.10. 核型分析 | 第33-34页 |
1.11. 细胞转染 | 第34页 |
2. 结果 | 第34-39页 |
2.1. 原代培养和继代培养 | 第34-35页 |
2.2. 最适培养基 | 第35页 |
2.3. 最适培养温度 | 第35-36页 |
2.4. 最适血清浓度 | 第36-37页 |
2.5. 细胞系的冻存和复苏 | 第37页 |
2.6. 分子表达 | 第37页 |
2.7. 核型分析 | 第37-38页 |
2.8. 细胞转染 | 第38-39页 |
3. 讨论 | 第39-41页 |
第三章 南方鲇精巢细胞系的建立及生物学特征 | 第41-47页 |
1. 材料与方法 | 第41-42页 |
1.1. 实验材料 | 第41页 |
1.2. 实验试剂 | 第41页 |
1.3. 实验溶液配制方法 | 第41页 |
1.4. 实验仪器 | 第41页 |
1.5. 原代培养 | 第41页 |
1.6. 最适生长条件的确定 | 第41页 |
1.7. 传代培养 | 第41页 |
1.8. 细胞系的冻存和复苏 | 第41页 |
1.9. 分子表达 | 第41页 |
1.10. 核型分析 | 第41-42页 |
1.11. 细胞转染 | 第42页 |
2. 结果 | 第42-45页 |
2.1. 原代培养和继代培养 | 第42页 |
2.2. 细胞系的冻存和复苏 | 第42页 |
2.3. 分子表达 | 第42-43页 |
2.4. 核型分析 | 第43-45页 |
2.5. 细胞转染 | 第45页 |
3. 讨论 | 第45-47页 |
第四章 环境雌激素检测体系的建立 | 第47-63页 |
1. 引言 | 第47页 |
2. 材料与方法 | 第47-55页 |
2.1. 实验试剂 | 第47-48页 |
2.2. 实验溶液配置方法 | 第48-49页 |
2.3. 实验仪器 | 第49-50页 |
2.4. ERα基因克隆及重组质粒构建 | 第50-54页 |
2.5. ERE4基因克隆及重组质粒构建 | 第54页 |
2.6. 环境雌激素荧光素酶活性检测 | 第54-55页 |
3. 结果 | 第55-61页 |
3.1. 重组质粒的构建 | 第55-58页 |
3.2. 环境雌激素荧光素酶活性检测 | 第58-61页 |
4. 讨论 | 第61-63页 |
全文结论 | 第63-65页 |
参考文献 | 第65-73页 |
致谢 | 第73-75页 |
在读期间所发表的文章 | 第75页 |
在读期间参加科研情况 | 第75页 |