| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 文献综述 | 第9-25页 |
| 中英文缩略 | 第25-27页 |
| 1.引言 | 第27-29页 |
| 2.材料 | 第29-31页 |
| 2.1 血清样本 | 第29页 |
| 2.2 主要试剂 | 第29-30页 |
| 2.3 主要设备 | 第30-31页 |
| 3.实验所需试剂配制 | 第31-35页 |
| 3.1 SDS-PAGE电泳所需试剂 | 第31-32页 |
| 3.2 LB培养基 | 第32页 |
| 3.3 碱裂解法抽提质粒溶液 | 第32-33页 |
| 3.4 核酸电泳所需试剂 | 第33页 |
| 3.5 蛋白纯化、复性所需试剂 | 第33-34页 |
| 3.6 免疫印迹所需试剂 | 第34页 |
| 3.7 ELISA所需试剂 | 第34-35页 |
| 4.方法 | 第35-41页 |
| 4.1 LEP编码基因人工合成 | 第35页 |
| 4.2 原核表达载体pMD19-T-LEP的构建 | 第35-36页 |
| 4.3 原核表达载体pET-28a(+)-PstS1-LEP的构建 | 第36-37页 |
| 4.4 诱导表达 | 第37-38页 |
| 4.5 免疫印迹鉴定血清免疫原性 | 第38-39页 |
| 4.6 Lowry法测PstS1-LEP蛋白浓度 | 第39页 |
| 4.7 ELISA检测血清抗体 | 第39-40页 |
| 4.8 统计分析 | 第40-41页 |
| 5.结果 | 第41-61页 |
| 5.1 重组质粒pMD19-T-LEP表达载体的构建 | 第41页 |
| 5.2 pET-28a-PstS1LEP重组表达载体的构建 | 第41-42页 |
| 5.3 重组PstS1-LEP蛋白的诱导表达、纯化 | 第42-44页 |
| 5.4 PstS1-LEP融合蛋白的免疫印迹 | 第44-46页 |
| 5.5 蛋白含量的确定 | 第46-47页 |
| 5.6 研究对象构成特征 | 第47页 |
| 5.7 ELISA检测结果 | 第47-53页 |
| 5.8 不同临界值下血清学诊断评价 | 第53-61页 |
| 6.讨论 | 第61-65页 |
| 7.结论 | 第65-67页 |
| 8.参考文献 | 第67-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 已发表论文 | 第77页 |
