| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 缩略词表 | 第11-12页 |
| 一、前言 | 第12-15页 |
| 二、材料与方法 | 第15-33页 |
| (一) 实验材料 | 第15-22页 |
| 1.主要试剂 | 第15-17页 |
| 2.实验仪器设备 | 第17-18页 |
| 3.试剂配制 | 第18-21页 |
| 4.实验动物 | 第21-22页 |
| (二) 实验方法 | 第22-33页 |
| 1.CFA炎性疼痛模型的建立 | 第22页 |
| 2.动物行为测试 | 第22-23页 |
| 3.Real-time PCR技术 | 第23-26页 |
| 4.蛋白质抽提和Western blot技术 | 第26-28页 |
| 5.背根神经节细胞分离及培养 | 第28-29页 |
| 6.全细胞膜片钳记录 | 第29-30页 |
| 7.脊髓横切片技术 | 第30-31页 |
| 8.脊髓横切片膜片钳记录 | 第31页 |
| 9.鞘内支管手术 | 第31-32页 |
| 10.统计学处理 | 第32-33页 |
| 三、实验结果 | 第33-47页 |
| (一) MCP-1易化CFA炎性大鼠疼痛行为 | 第33-35页 |
| (二) CFA大鼠DRG中MCP-1及CCR2表达量增加 | 第35-37页 |
| (三) MCP-1增强CFA大鼠DRG痛觉神经元兴奋性 | 第37-39页 |
| (四) MCP-1增强CFA大鼠DRG神经元TTXS钠电流幅度并左移激活曲线 | 第39-41页 |
| (五) 正常大鼠鞘内注射MCP-1诱导产生疼痛行为 | 第41-42页 |
| (六) MCP-1增强正常大鼠脊髓后角兴奋性突触传递并增强AMPA和NMDA电流 | 第42-44页 |
| (七) MCP-1抑制正常大鼠脊髓后角抑制性突触传递并抑制GABA电流 | 第44-47页 |
| 四、讨论 | 第47-53页 |
| (一) MCP-1对CFA大鼠痛觉行为的易化作用 | 第47-48页 |
| (二) MCP-1增强CFA大鼠DRG痛觉神经元的兴奋性 | 第48-50页 |
| (三) 正常大鼠鞘内注射MCP-1后痛觉行为的变化 | 第50-51页 |
| (四) MCP-1对脊髓后角胶状质层神经元突触传递效能的调控 | 第51-53页 |
| 五、结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 综述 中枢敏感化与痛觉过敏 | 第58-66页 |
| 一、中枢敏感化 | 第58-59页 |
| 二、中枢敏感化的不同形式 | 第59页 |
| 三、迅速启动的中枢敏感化机制 | 第59-61页 |
| 四、延时启动转录依赖性的中枢敏感化的机制 | 第61-62页 |
| 五、结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-66页 |
| 发表论文情况 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
