| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-10页 |
| 第1章 前言 | 第10-13页 |
| 第2章 材料与方法 | 第13-21页 |
| 2.1 实验材料 | 第13-16页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第13页 |
| 2.1.2 抗体 | 第13-14页 |
| 2.1.3 引物 | 第14页 |
| 2.1.4 实验材料 | 第14-15页 |
| 2.1.5 实验仪器 | 第15-16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-20页 |
| 2.2.1 动物模型建立 | 第16页 |
| 2.2.2 荧光金逆行标记和计数 | 第16-17页 |
| 2.2.3 TUNEL染色 | 第17页 |
| 2.2.4 蛋白印迹 | 第17-18页 |
| 2.2.5 石蜡切片 | 第18-19页 |
| 2.2.6 HE染色 | 第19页 |
| 2.2.7 免疫组化染色和免疫荧光染色 | 第19页 |
| 2.2.8 定量PCR | 第19-20页 |
| 2.3 统计学分析 | 第20-21页 |
| 第3章 结果 | 第21-32页 |
| 3.1 Sirtuins在小鼠、大鼠和人视网膜中的表达 | 第21-26页 |
| 3.1.1 正常成年小鼠、大鼠和人视网膜中Sirtuins蛋白和mRNA的表达水平 | 第21-23页 |
| 3.1.2 Sirtuins在正常小鼠、大鼠和人视网膜中的表达及细胞定位 | 第23-24页 |
| 3.1.3 Sirtuins在不同年龄阶段和缺血再灌注损伤大鼠视网膜中变化 | 第24-26页 |
| 3.2 白藜芦醇抑制I/R损伤后的视网膜病理变化 | 第26-30页 |
| 3.2.1 白藜芦醇减少I/R损伤后的视网膜组织变化 | 第26页 |
| 3.2.2 白藜芦醇减少I/R损伤后RGCs的减少 | 第26-27页 |
| 3.2.3 白藜芦醇抑制I/R损伤后RGCs的凋亡 | 第27-30页 |
| 3.3 白藜芦醇抑制I/R损伤后反应性胶质细胞增生活化 | 第30页 |
| 3.4 白藜芦醇抑制I/R损伤后视网膜炎症反应 | 第30-32页 |
| 第4章 讨论 | 第32-36页 |
| 第5章 结论与展望 | 第36-37页 |
| 致谢 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-42页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第42-43页 |
| 综述 | 第43-51页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
