| 中文摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-14页 |
| 縮略语词汇表 | 第15-16页 |
| 第1章 OEL诱导神经胶质瘤细胞凋亡和G_2/M期阻滞 | 第16-41页 |
| 1.1 前言 | 第16-23页 |
| 1.1.1 凋亡 | 第16-19页 |
| 1.1.2 细胞周期调控 | 第19-20页 |
| 1.1.3 P53 | 第20-23页 |
| 1.2 实验材料 | 第23-25页 |
| 1.2.1 细胞株 | 第23-24页 |
| 1.2.2 化合物 | 第24页 |
| 1.2.3 试剂 | 第24页 |
| 1.2.4 仪器 | 第24-25页 |
| 1.3 试验方法 | 第25-30页 |
| 1.3.1 细胞培养 | 第25页 |
| 1.3.2 MTT法检测OEL的细胞毒性 | 第25页 |
| 1.3.3 免疫荧光染色 | 第25-26页 |
| 1.3.4 凋亡检测 | 第26-27页 |
| 1.3.5 RNA提取和实时定量PCR检测 | 第27-28页 |
| 1.3.6 细胞周期分布检测 | 第28页 |
| 1.3.7 Western blot蛋白含量分析 | 第28-30页 |
| 1.4 实验结果 | 第30-39页 |
| 1.4.1 OEL抑制神经胶质瘤细胞增殖 | 第30-31页 |
| 1.4.2 OEL诱导神经胶质瘤细胞凋亡 | 第31-32页 |
| 1.4.3 OEL诱导神经胶质瘤细胞G_2/M期阻滞 | 第32-33页 |
| 1.4.4 OEL影响细胞周期相关蛋白和凋亡相关蛋白的表达 | 第33-34页 |
| 1.4.5 OEL诱导神经胶质瘤细胞DNA损伤 | 第34-35页 |
| 1.4.6 OEL诱导细胞周期阻滞和凋亡依赖于p53的表达 | 第35-39页 |
| 1.5 结论 | 第39-41页 |
| 第2章 OEL诱导人肺癌细胞凋亡和自噬的分子机制研究 | 第41-67页 |
| 2.1 前言 | 第41-49页 |
| 2.1.1 自噬 | 第41-46页 |
| 2.1.2 NF-κB | 第46-49页 |
| 2.2 材料 | 第49-50页 |
| 2.2.1 细胞株 | 第49页 |
| 2.2.2 化合物 | 第49-50页 |
| 2.2.3 试剂 | 第50页 |
| 2.3 实验方法 | 第50-52页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第50页 |
| 2.3.2 MTT法检测OEL的细胞毒性 | 第50页 |
| 2.3.3 细胞形态学观察 | 第50页 |
| 2.3.4 FITC-AnnexinV双染法检测凋亡 | 第50-51页 |
| 2.3.5 AO染色检测酸性囊泡的形成 | 第51页 |
| 2.3.6 MDC染色检测自噬泡的形成 | 第51页 |
| 2.3.7 免疫荧光观察细胞内LC3的聚集 | 第51-52页 |
| 2.3.8 ROS水平检测 | 第52页 |
| 2.3.9 Western Blot分析LC3,Beclin1,NF-κB蛋白表达的变化 | 第52页 |
| 2.3.10 mRNA提取和实时定量PCR | 第52页 |
| 2.4 实验结果 | 第52-65页 |
| 2.4.1 OEL诱导人肺癌细胞凋亡 | 第52-54页 |
| 2.4.2 OEL诱导A549和和H460细胞自噬 | 第54-58页 |
| 2.4.3 3-MA抑制自噬能够明显促进凋亡 | 第58-60页 |
| 2.4.4 OEL诱导ROS产生 | 第60页 |
| 2.4.5 抑制ROS能够同时抑制OEL诱导的凋亡和自噬 | 第60-62页 |
| 2.4.6 OEL活化NF-κB，并且抑制NF-κB能够抑制OEL诱导的自噬,促进凋亡 | 第62-64页 |
| 2.4.7 抑制NF-κB的活性促进ROS产生,而抑制ROS对NF-κB活化没有影响 | 第64-65页 |
| 2.5 结论 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第77-79页 |
| 附件 | 第79页 |
