| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 研究现状、成果 | 第12-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-14页 |
| 一、环孢霉素A对人晶状体上皮细胞的有效抑制浓度 | 第14-27页 |
| 1.1 对象和方法 | 第14-17页 |
| 1.1.1 使用材料 | 第14-15页 |
| 1.1.2 HLEB-3的体外培养 | 第15-16页 |
| 1.1.3 实验方法 | 第16-17页 |
| 1.1.4 统计分析 | 第17页 |
| 1.2 结果 | 第17-24页 |
| 1.2.1 细胞传代培养 | 第17-18页 |
| 1.2.2 倒置相差显微镜观察 | 第18页 |
| 1.2.3 增殖测定 | 第18-23页 |
| 1.2.4 CsA作用于HLE-B3的IC_(50) | 第23-24页 |
| 1.3 讨论 | 第24-26页 |
| 1.3.1 后发性白内障的发病机制 | 第24-25页 |
| 1.3.2 CsA对人晶状体上皮细胞抑制的最小作用浓度 | 第25-26页 |
| 1.3.3 CsA的IC50 | 第26页 |
| 1.4 小结 | 第26-27页 |
| 二、PCNA在经过CsA处理后的HLEB-3细胞中的表达 | 第27-39页 |
| 2.1 实验对象和方法 | 第27-31页 |
| 2.1.1 使用材料同1.1.1 | 第27页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第27页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第27页 |
| 2.1.4 细胞培养同1.1.2 | 第27页 |
| 2.1.5 缓冲液配置 | 第27-28页 |
| 2.1.6 1%谅脂糖凝胶配置 | 第28页 |
| 2.1.7 实验方法 | 第28-30页 |
| 2.1.8 电泳 | 第30页 |
| 2.1.9 统计学处理 | 第30-31页 |
| 2.2 结果 | 第31-33页 |
| 2.2.1 CsA对PCNA mRNA的表达具有抑制作用 | 第31-32页 |
| 2.2.2 免疫组化测HLE-B3中PCNA蛋白的表达 | 第32-33页 |
| 2.3 讨论 | 第33-38页 |
| 2.3.1 CsA作用机制 | 第34-35页 |
| 2.3.2 PCNA基因的表达 | 第35-38页 |
| 2.4 小结 | 第38-39页 |
| 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-45页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第45-46页 |
| 综述 环孢霉素A对人晶状体上皮细胞的抑制的体外研究 | 第46-58页 |
| 摘要 | 第46页 |
| Abstract | 第46页 |
| 0 引言 | 第46页 |
| 1 转化生长因子β(TGF-β)与PCO | 第46-48页 |
| 2 碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)与PCO | 第48-49页 |
| 3 结缔组织生长因子(CTGF)与PCO | 第49-50页 |
| 4 基质金属蛋白酶(Matrixmetalloproteinase,MMPs)与PCO | 第50页 |
| 5 整合素/去整合素与PCO | 第50-51页 |
| 6 p21蛋白与PCO | 第51-52页 |
| 7 PCNA与PCO | 第52页 |
| 8 展望 | 第52-53页 |
| 综述参考文献 | 第53-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
