摘要 | 第5-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
英文缩略词表 | 第16-17页 |
第一章 绪论 | 第17-44页 |
1.1 膳食干预预防慢性非传染性疾病概述 | 第17-19页 |
1.2 姜黄素类化合物的概述 | 第19-28页 |
1.2.1 姜黄素类化合物的化学成分、结构和性质 | 第19-23页 |
1.2.2 姜黄素类化合物的构效关系 | 第23-25页 |
1.2.3 姜黄素类化合物的抗肿瘤机理 | 第25-27页 |
1.2.4 姜黄素类化合物在食品中的应用 | 第27-28页 |
1.2.5 姜黄素类化合物在应用中存在的问题 | 第28页 |
1.3 右旋龙脑概述 | 第28-31页 |
1.3.1 右旋龙脑的简介 | 第28-29页 |
1.3.2 右旋龙脑促进药物跨膜吸收的研究现状 | 第29-30页 |
1.3.3 右旋龙脑在抗肿瘤领域的研究现状 | 第30-31页 |
1.4 细胞凋亡机制概述 | 第31-35页 |
1.4.1 线粒体途径(mitochondria-mediated pathway) | 第31-32页 |
1.4.2 死亡受体途径 (death receptor-mediated pathway) | 第32-34页 |
1.4.3 细胞周期调控 | 第34-35页 |
1.5 细胞信号传导通路概述 | 第35-38页 |
1.5.1 MAPK通路对细胞周期的调节 | 第35-36页 |
1.5.2 P13K/AKT通路对细胞周期的调节 | 第36-37页 |
1.5.3 p53 通路对细胞周期的调节 | 第37-38页 |
1.6 蛋白组学概述 | 第38-41页 |
1.6.1 蛋白质组学的研究内容 | 第38页 |
1.6.2 蛋白质组学的研究方法 | 第38-41页 |
1.7 本课题的研究意义和研究内容 | 第41-44页 |
1.7.1 本课题的研究意义 | 第41-43页 |
1.7.2 本课题的研究内容 | 第43-44页 |
第二章 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对HepG2 细胞生长影响初探 | 第44-63页 |
2.1 引言 | 第44-45页 |
2.2 实验材料与仪器设备 | 第45-46页 |
2.2.1 材料与试剂 | 第45页 |
2.2.2 仪器与设备 | 第45-46页 |
2.3 实验方法 | 第46-50页 |
2.3.1 溶液的配制 | 第46-48页 |
2.3.2 细胞的培养 | 第48-49页 |
2.3.3 细胞处理与形态观察 | 第49页 |
2.3.4 MTT测定细胞存活率 | 第49-50页 |
2.4 实验结果与讨论 | 第50-61页 |
2.4.1 姜黄素类化合物对HepG2 和L02 细胞生长的影响 | 第50-53页 |
2.4.2 右旋龙脑对HepG2 和L02 细胞生长的影响 | 第53-54页 |
2.4.3 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对HepG2 和L02 细胞生长的影响 | 第54-61页 |
2.5 本章小结 | 第61-63页 |
第三章 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对HepG2 细胞的作用靶点研究 | 第63-76页 |
3.1 引言 | 第63-64页 |
3.2 实验试剂与仪器设备 | 第64-65页 |
3.2.1 材料与试剂 | 第64页 |
3.2.2 仪器与设备 | 第64-65页 |
3.3 实验方法 | 第65-67页 |
3.3.1 溶液的配制 | 第65页 |
3.3.2 细胞培养 | 第65页 |
3.3.3 细胞内姜黄素类化合物含量的测定 | 第65-66页 |
3.3.4 细胞内姜黄素类化合物的定位测定 | 第66-67页 |
3.3.5 Tf、FA和RGD封闭实验 | 第67页 |
3.4 实验结果与讨论 | 第67-75页 |
3.4.1 姜黄素类化合物的标准曲线 | 第67-68页 |
3.4.2 细胞内姜黄素类化合物的含量 | 第68-70页 |
3.4.3 细胞内姜黄素类化合物的定位 | 第70-71页 |
3.4.4 姜黄素类化合物进入细胞的途径 | 第71-75页 |
3.5 本章小结 | 第75-76页 |
第四章 右旋龙脑促进姜黄素类化合物在HepG2 细胞中吸收的机理研究 | 第76-90页 |
4.1 引言 | 第76-77页 |
4.2 实验试剂与仪器设备 | 第77-79页 |
4.2.1 材料与试剂 | 第77-78页 |
4.2.2 仪器与设备 | 第78-79页 |
4.3 实验方法 | 第79-83页 |
4.3.1 溶液的配制 | 第79-80页 |
4.3.2 蛋白质样品的准备 | 第80-81页 |
4.3.3 Western blot检测ABC家族蛋白 | 第81-83页 |
4.3.4 YO-PRO-1 染色检测细胞膜通透性 | 第83页 |
4.4 实验结果与讨论 | 第83-88页 |
4.4.1 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对ABCB1 耐药蛋白的影响 | 第83-85页 |
4.4.2 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对ABCC1 和ABCG2 耐药蛋白的影响 | 第85-86页 |
4.4.3 右旋龙脑对细胞通透性的影响 | 第86-88页 |
4.4.4 右旋龙脑促进姜黄素类化合物吸收的物理模型 | 第88页 |
4.5 本章小结 | 第88-90页 |
第五章 右旋龙脑联合姜黄素类化合物抑制HepG2 细胞增殖的机理研究 | 第90-108页 |
5.1 引言 | 第90页 |
5.2 实验试剂与仪器设备 | 第90-91页 |
5.2.1 材料与试剂 | 第90-91页 |
5.2.2 仪器与设备 | 第91页 |
5.3 实验方法 | 第91-94页 |
5.3.1 溶液的配制 | 第91页 |
5.3.2 流式细胞术检测细胞周期 | 第91-93页 |
5.3.3 蛋白样品的准备 | 第93页 |
5.3.4 Western blot检测 | 第93页 |
5.3.5 ROS检测 | 第93-94页 |
5.3.6 NAC预处理对细胞存活率的影响 | 第94页 |
5.4 实验结果与讨论 | 第94-106页 |
5.4.1 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对HepG2 细胞的细胞周期分布的影响 | 第94-96页 |
5.4.2 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对细胞周期蛋白cyclin B1 及其激酶cdc2 活性的影响 | 第96-99页 |
5.4.3 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对MAPK通路和Akt通路的影响 | 第99-102页 |
5.4.4 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对ROS产生的影响 | 第102-105页 |
5.4.5 右旋龙脑与姜黄素类化合物引起细胞发生G2/M期阻滞涉及的信号通路图 | 第105-106页 |
5.5 本章小结 | 第106-108页 |
第六章 基于蛋白组学技术分析右旋龙脑联合姜黄素类化合物抑制HepG2 细胞增殖的分子机制 | 第108-133页 |
6.1 引言 | 第108页 |
6.2 实验试剂与仪器设备 | 第108-110页 |
6.2.1 材料与试剂 | 第108-110页 |
6.2.2 仪器与设备 | 第110页 |
6.3 实验方法 | 第110-120页 |
6.3.1 流式细胞实验 | 第110页 |
6.3.2 蛋白组学的方法步骤 | 第110-119页 |
6.3.3 蛋白样品的准备 | 第119页 |
6.3.4 Western blot检测 | 第119-120页 |
6.3.5 ROS检测 | 第120页 |
6.3.6 NAC预处理对细胞存活率的影响 | 第120页 |
6.3.7 NAC预处理对细胞周期的影响 | 第120页 |
6.3.8 NAC预处理对p53、p21 和p-histone的影响 | 第120页 |
6.4 实验结果与讨论 | 第120-131页 |
6.4.1 右旋龙脑联合姜黄素对HepG2 细胞的细胞周期分布的影响 | 第120-121页 |
6.4.2 右旋龙脑联合姜黄素处理HepG2 细胞后蛋白组学分析 | 第121-126页 |
6.4.3 右旋龙脑联合姜黄素对PSMA5、NPM和nhRNPC1/C2 蛋白的影响 | 第126-128页 |
6.4.4 右旋龙脑联合姜黄素对cdc2 和cyclin B1 蛋白的影响 | 第128-129页 |
6.4.5 右旋龙脑联合姜黄素对ROS产生的影响 | 第129-131页 |
6.4.6 右旋龙脑与姜黄素引起细胞发生G2/M期阻滞涉及的信号通路图 | 第131页 |
6.5 本章小结 | 第131-133页 |
结论与展望 | 第133-136页 |
参考文献 | 第136-158页 |
攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第158-160页 |
致谢 | 第160-162页 |
附件 | 第162页 |