摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
缩写词(Abbreviations) | 第9-13页 |
1 前言 | 第13-31页 |
1.1 国内外小麦研究育种现状 | 第13页 |
1.2 人工合成小麦研究进展 | 第13-14页 |
1.3 节节麦的研究进展 | 第14-15页 |
1.3.1 节节麦的分布 | 第14页 |
1.3.2 节节麦D基因组的研究进展 | 第14-15页 |
1.4 小麦籽粒性状研究进展 | 第15-16页 |
1.5 遗传群体的构建 | 第16-17页 |
1.5.1 亲本的选择 | 第17页 |
1.5.2 群体的大小 | 第17页 |
1.6 遗传群体的类型 | 第17-20页 |
1.6.1 F_2代群体 | 第18页 |
1.6.2 回交群体(BC1) | 第18-19页 |
1.6.3 重组自交系群体(RIL) | 第19页 |
1.6.4 近等基因系群体 | 第19页 |
1.6.5 加倍单倍体(Double Haploid)群体 | 第19-20页 |
1.7 染色体片段代换系群体的构建及应用 | 第20-21页 |
1.7.1 染色体片段代换系的构建 | 第20页 |
1.7.2 染色体片段代换系的应用 | 第20-21页 |
1.8 分子标记的研究进展 | 第21-24页 |
1.8.1 DNA限制片段长度多态性 | 第21-22页 |
1.8.2 DNA随机扩增多态性 | 第22页 |
1.8.3 AFLP | 第22-23页 |
1.8.4 SSR(Simple sequence repeats,简单重复序列) | 第23页 |
1.8.5 SNP(单核苷酸多态性)标记 | 第23-24页 |
1.8.6 几种新型的分子标记技术 | 第24页 |
1.9 遗传图谱的构建 | 第24-26页 |
1.9.1 分子遗传图谱的构建 | 第24-25页 |
1.9.2 小麦分子遗传图谱的构建 | 第25-26页 |
1.10 数量性状的QTL定位 | 第26-29页 |
1.10.1 QTL(Quantitative trait locus) | 第26-27页 |
1.10.2 QTL定位 | 第27-29页 |
1.11 本研究的目的及意义 | 第29-31页 |
2 材料与方法 | 第31-37页 |
2.1 供试材料 | 第31页 |
2.2 SSR分子标记的类型及来源 | 第31-32页 |
2.3 实验方法 | 第32-37页 |
2.3.1 田间试验设计 | 第32页 |
2.3.2 籽粒相关性状调查 | 第32页 |
2.3.3 基因组DNA的提取和纯化 | 第32-33页 |
2.3.4 基于PCR反应原理的SSR标记分析 | 第33-37页 |
3 结果与分析 | 第37-67页 |
3.1 BC_1F_7代换系群体的构建 | 第37页 |
3.2 BC_1F_7群体导入的节节麦片段 | 第37-40页 |
3.2.1 亲本间多态性引物的筛选 | 第37-38页 |
3.2.2 SSR分子标记引物在分离小群体中的多态性筛选结果 | 第38-39页 |
3.2.3 BC_1F_7群体多态性引物扫描及节节麦导入片段的分析 | 第39-40页 |
3.3 BC_1F_7代换系群体的表型变异及分析 | 第40-43页 |
3.3.1 辉县(HX)BC_1F_7代换系群体的表型变异及分析 | 第40-42页 |
3.3.2 中牟(ZM)BC_1F_7代换系群体的表型变异及分析 | 第42-43页 |
3.4 BC_1F_7代换系群体株系性状间的相关性分析 | 第43-45页 |
3.4.1 辉县BC_1F_7代换系群体的表型变异及分析 | 第43-44页 |
3.4.2 中牟BC_1F_7代换系群体的表型变异及分析 | 第44-45页 |
3.5 BC_1F_7代换系群体各性状的QTL定位及分析 | 第45-67页 |
3.5.1 检验统计量LOD临界值的选择 | 第45-46页 |
3.5.2 辉县BC_1F_7群体相关性状的QTL定位及分析 | 第46-53页 |
3.5.3 中牟BC_1F_7群体相关性状的QTL定位及分析 | 第53-62页 |
3.5.4 群体千粒重较高的材料 | 第62-67页 |
4 讨论 | 第67-73页 |
4.1 染色体片段代换系的创制与鉴定 | 第67-68页 |
4.2 LOD临界值的选择 | 第68-69页 |
4.3 籽粒性状的QTL分析 | 第69-73页 |
5 结论 | 第73-75页 |
参考文献 | 第75-89页 |
致谢 | 第89-90页 |