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小麦—节节麦D组染色体片段代换系的构建及籽粒性状的QTL定位

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
缩写词(Abbreviations)第9-13页
1 前言第13-31页
    1.1 国内外小麦研究育种现状第13页
    1.2 人工合成小麦研究进展第13-14页
    1.3 节节麦的研究进展第14-15页
        1.3.1 节节麦的分布第14页
        1.3.2 节节麦D基因组的研究进展第14-15页
    1.4 小麦籽粒性状研究进展第15-16页
    1.5 遗传群体的构建第16-17页
        1.5.1 亲本的选择第17页
        1.5.2 群体的大小第17页
    1.6 遗传群体的类型第17-20页
        1.6.1 F_2代群体第18页
        1.6.2 回交群体(BC1)第18-19页
        1.6.3 重组自交系群体(RIL)第19页
        1.6.4 近等基因系群体第19页
        1.6.5 加倍单倍体(Double Haploid)群体第19-20页
    1.7 染色体片段代换系群体的构建及应用第20-21页
        1.7.1 染色体片段代换系的构建第20页
        1.7.2 染色体片段代换系的应用第20-21页
    1.8 分子标记的研究进展第21-24页
        1.8.1 DNA限制片段长度多态性第21-22页
        1.8.2 DNA随机扩增多态性第22页
        1.8.3 AFLP第22-23页
        1.8.4 SSR(Simple sequence repeats,简单重复序列)第23页
        1.8.5 SNP(单核苷酸多态性)标记第23-24页
        1.8.6 几种新型的分子标记技术第24页
    1.9 遗传图谱的构建第24-26页
        1.9.1 分子遗传图谱的构建第24-25页
        1.9.2 小麦分子遗传图谱的构建第25-26页
    1.10 数量性状的QTL定位第26-29页
        1.10.1 QTL(Quantitative trait locus)第26-27页
        1.10.2 QTL定位第27-29页
    1.11 本研究的目的及意义第29-31页
2 材料与方法第31-37页
    2.1 供试材料第31页
    2.2 SSR分子标记的类型及来源第31-32页
    2.3 实验方法第32-37页
        2.3.1 田间试验设计第32页
        2.3.2 籽粒相关性状调查第32页
        2.3.3 基因组DNA的提取和纯化第32-33页
        2.3.4 基于PCR反应原理的SSR标记分析第33-37页
3 结果与分析第37-67页
    3.1 BC_1F_7代换系群体的构建第37页
    3.2 BC_1F_7群体导入的节节麦片段第37-40页
        3.2.1 亲本间多态性引物的筛选第37-38页
        3.2.2 SSR分子标记引物在分离小群体中的多态性筛选结果第38-39页
        3.2.3 BC_1F_7群体多态性引物扫描及节节麦导入片段的分析第39-40页
    3.3 BC_1F_7代换系群体的表型变异及分析第40-43页
        3.3.1 辉县(HX)BC_1F_7代换系群体的表型变异及分析第40-42页
        3.3.2 中牟(ZM)BC_1F_7代换系群体的表型变异及分析第42-43页
    3.4 BC_1F_7代换系群体株系性状间的相关性分析第43-45页
        3.4.1 辉县BC_1F_7代换系群体的表型变异及分析第43-44页
        3.4.2 中牟BC_1F_7代换系群体的表型变异及分析第44-45页
    3.5 BC_1F_7代换系群体各性状的QTL定位及分析第45-67页
        3.5.1 检验统计量LOD临界值的选择第45-46页
        3.5.2 辉县BC_1F_7群体相关性状的QTL定位及分析第46-53页
        3.5.3 中牟BC_1F_7群体相关性状的QTL定位及分析第53-62页
        3.5.4 群体千粒重较高的材料第62-67页
4 讨论第67-73页
    4.1 染色体片段代换系的创制与鉴定第67-68页
    4.2 LOD临界值的选择第68-69页
    4.3 籽粒性状的QTL分析第69-73页
5 结论第73-75页
参考文献第75-89页
致谢第89-90页

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