摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
主要缩略词一览表 | 第12-13页 |
第一章 综述 | 第13-19页 |
1.1 引言 | 第13页 |
1.2 有机磷农药的神经毒性 | 第13-15页 |
1.2.1 有机磷农药影响神经递质代谢 | 第13-14页 |
1.2.2 有机磷农药对认知功能的影响 | 第14-15页 |
1.2.3 有机磷农药对不同性别的影响 | 第15页 |
1.3 海马的结构及发育 | 第15-17页 |
1.3.1 海马的结构 | 第15-16页 |
1.3.2 海马的发育 | 第16-17页 |
1.4 脑与三维重构技术 | 第17-18页 |
1.5 研究创新点及意义 | 第18-19页 |
第二章 毒死蜱对胚胎脑乙酰胆碱酯酶活性的影响 | 第19-35页 |
2.1 前言 | 第19页 |
2.2 实验材料 | 第19-23页 |
2.2.1 实验动物 | 第19页 |
2.2.2 实验仪器 | 第19-20页 |
2.2.3 实验试剂 | 第20-21页 |
2.2.4 实验试剂的配制 | 第21-23页 |
2.3 实验方法 | 第23-28页 |
2.3.1 实验动物及处理 | 第23页 |
2.3.2 胚胎样品处理及蛋白质含量测定 | 第23-24页 |
2.3.3 胚胎性别的测定 | 第24-27页 |
2.3.4 胆碱酯酶活力测定 | 第27页 |
2.3.5 统计分析 | 第27-28页 |
2.4 实验结果 | 第28-33页 |
2.4.1 蛋白含量标准曲线 | 第28页 |
2.4.2 小鼠胚胎基因组DNA提取及PCR扩增 | 第28-29页 |
2.4.3 CPF处理对胚胎脑胆碱酯酶活力的影响 | 第29-32页 |
2.4.4 CPF作用的性别差异 | 第32-33页 |
2.5 本章小结 | 第33-35页 |
第三章 毒死蜱对胚胎脑海马神经细胞发育的影响 | 第35-53页 |
3.1 前言 | 第35页 |
3.2 实验仪器与试剂 | 第35-37页 |
3.2.1 实验仪器和耗材 | 第35-36页 |
3.2.2 实验试剂 | 第36页 |
3.2.3 试剂配制 | 第36-37页 |
3.3 实验方法 | 第37-40页 |
3.3.1 实验动物及处理 | 第37页 |
3.3.2 胚胎制备与固定 | 第37页 |
3.3.3 石蜡包埋 | 第37-38页 |
3.3.4 石蜡切片 | 第38页 |
3.3.5 Nissl染色 | 第38-39页 |
3.3.6 各时期海马形态学观察及计数 | 第39页 |
3.3.7 统计分析 | 第39-40页 |
3.4 结果与讨论 | 第40-51页 |
3.4.1 神经细胞的判断 | 第40页 |
3.4.2 CPF对E12海马原基细胞的影响 | 第40-42页 |
3.4.3 CPF对E15海马原基细胞的影响 | 第42-45页 |
3.4.4 CPF对E18海马原基细胞的影响 | 第45-50页 |
3.4.5 不同时间点海马形态的发育变化 | 第50-51页 |
3.5 本章小结 | 第51-53页 |
第四章 毒死蜱对胚胎脑海马三维结构的影响 | 第53-63页 |
4.1 前言 | 第53页 |
4.2 实验仪器及材料 | 第53页 |
4.2.1 实验主要仪器和软件 | 第53页 |
4.2.2 实验试剂 | 第53页 |
4.3 实验方法 | 第53-54页 |
4.3.1 实验动物及处理 | 第53页 |
4.3.2 胚胎制备与固定 | 第53-54页 |
4.3.3 石蜡包埋 | 第54页 |
4.3.4 石蜡切片 | 第54页 |
4.3.5 Nissl染色 | 第54页 |
4.4 计算机对图像的处理及结果分析 | 第54-61页 |
4.4.1 脑组织拍照与数据库的构建 | 第54页 |
4.4.2 创建图片的手动配准模板 | 第54-56页 |
4.4.3 将拍摄图片转化成小内存的灰度图片 | 第56页 |
4.4.4 微调灰度图片边缘与背景 | 第56-57页 |
4.4.5 利用灰度图片进行三维重构 | 第57-59页 |
4.4.6 重构后海马和所在脑截面的参数结果 | 第59-61页 |
4.4.6.1 Control组重构后海马和所在脑截面的参数结果 | 第59-60页 |
4.4.6.2 CPF 5mg/kg组重构后海马和所在截面的参数结果 | 第60-61页 |
4.4.7 CPF对E18海马总体积的影响 | 第61页 |
4.5 本章小结 | 第61-63页 |
参考文献 | 第63-69页 |
致谢 | 第69-70页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第70页 |