致谢 | 第4-7页 |
摘要 | 第7-9页 |
1 文献综述 | 第9-18页 |
1.1 蚜虫的生长发育习性 | 第9页 |
1.2 蚜虫与植物的亲和关系的建立 | 第9-10页 |
1.3 植物对蚜虫取食的防御机制 | 第10-13页 |
1.3.1 植物抗蚜的物理机制 | 第10页 |
1.3.2 植物抗蚜的化学机制 | 第10-11页 |
1.3.3 植物诱导防御 | 第11-13页 |
1.3.3.1 植物抗蚜反应的早期信号 | 第11-12页 |
1.3.3.2 植物抗蚜防御信号途径 | 第12页 |
1.3.3.3 植物抗蚜防御反应 | 第12-13页 |
1.4 EPG技术在蚜虫取食行为研究中的应用 | 第13-16页 |
1.4.1 EPG技术的原理 | 第13-14页 |
1.4.2 EPG技术在植物抗蚜性研究中的应用 | 第14-15页 |
1.4.3 寄主理化性状对蚜虫刺吸波形的影响 | 第15-16页 |
1.5 钾对植物抗蚜性的影响 | 第16-18页 |
1.5.1 钾素营养状况对植物虫害发生的影响 | 第16页 |
1.5.2 施钾对植物基础代谢的影响及其与抗蚜性的关系 | 第16-17页 |
1.5.3 钾素对植物次生代谢的影响 | 第17页 |
1.5.4 钾及其与蚜虫取食互作对植物防御信号途径的影响 | 第17-18页 |
2 引言 | 第18-20页 |
3 材料与方法 | 第20-25页 |
3.1 试验设计及其供试材料培养 | 第20页 |
3.2 试验方法 | 第20-24页 |
3.2.1 EPG测定方法 | 第20页 |
3.2.2 冰冻切片制作和胼胝质染色观察试验方法 | 第20-21页 |
3.2.2.1 冰冻切片的制作方法 | 第20-21页 |
3.2.2.2 胼胝质的染色和观察方法 | 第21页 |
3.2.3 相关基因表达荧光定量PCR试验方法 | 第21-24页 |
3.2.3.1 引物查询 | 第21-22页 |
3.2.3.2 总RNA的提取和纯化 | 第22页 |
3.2.3.3 总RNA的浓度和完整性检测 | 第22页 |
3.2.3.4 cDNA的合成 | 第22-23页 |
3.2.3.5 cDNA的扩增和质量检测 | 第23页 |
3.2.3.6 qPCR扩增检测 | 第23-24页 |
3.3 数据分析 | 第24-25页 |
4 结果与分析 | 第25-37页 |
4.1 蚜虫在不同钾水平小麦叶片上取食的EPG波形结果与分析 | 第25-29页 |
4.1.1 麦长管蚜在不同钾水平麦株叶表非刺探路径EPG波形比较 | 第25页 |
4.1.2 麦长管蚜在不同钾水平麦株叶表皮细胞和叶肉细胞刺探路径EPG波形比较 | 第25-26页 |
4.1.3 麦长管蚜在不同钾水平麦株叶片韧皮部取食EPG波形比较 | 第26-27页 |
4.1.4 麦长管蚜在不同钾水平麦株叶片木质部取食EPG波形比较 | 第27-28页 |
4.1.5 蚜虫取食过程中产生的各种波形持续时间总和占观测时间的百分比 | 第28-29页 |
4.2 不同钾水平下蚜虫取食的小麦叶部切片胼胝质沉积分析 | 第29-31页 |
4.2.1 麦长管蚜在不同钾水平小麦叶片韧皮部取食胼胝质沉积面积比较 | 第29-31页 |
4.2.2 麦长管蚜在不同钾水平小麦叶片韧皮部取食胼胝质面积占维管束面积的比较 | 第31页 |
4.3 不同钾水平蚜虫取食小麦叶片相关基因表达的荧光定量PCR分析 | 第31-37页 |
4.3.1 样品总RNA和cDNA质量检测 | 第31-32页 |
4.3.2 样品总RNA浓度和纯度检测 | 第32-34页 |
4.3.3 胼胝质代谢相关的基因在不同钾水平处理的小麦叶片中的表达水平检测 | 第34-37页 |
4.3.3.1 GSL基因表达水平检测 | 第34-35页 |
4.3.3.2 BG基因表达水平检测 | 第35页 |
4.3.3.3 JA、ET和SA合成相关基因在不同钾水平处理的小麦叶片中的表达水平检测 | 第35-37页 |
5 讨论 | 第37-42页 |
5.1 供钾水平对蚜虫取食小麦叶片EPG波形的影响 | 第37-38页 |
5.2 供钾水平对蚜虫取食诱导的韧皮部胼胝质沉积的影响 | 第38-40页 |
5.3 蚜虫取食对不同供钾水平下小麦中JA、ET和SA相关基因表达量的影响 | 第40-42页 |
6 结论 | 第42-43页 |
参考文献 | 第43-54页 |
ABSTRACT | 第54-56页 |