| 中文摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 缩略词(Abbreviation) | 第16-17页 |
| 绪论 | 第17-21页 |
| 第一部分 文献综述 | 第21-32页 |
| 第二部分 高氧诱导ROP模型SD大鼠血浆循环miRNA表达谱的筛选 | 第32-55页 |
| 2.1 前言 | 第32-33页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第33-43页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第33-34页 |
| 2.2.2 实验样本 | 第34页 |
| 2.2.3 研究方法 | 第34-43页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第43-53页 |
| 2.3.1 ROP模型大鼠的构建与表征 | 第43-44页 |
| 2.3.2 血清样本的RNA提取及质控结果 | 第44-45页 |
| 2.3.3 循环miRNA的高通量测序文库的构建与质控结果 | 第45-47页 |
| 2.3.4 循环miRNA的高通量测序的初步分析 | 第47-53页 |
| 2.4 小结 | 第53-55页 |
| 第三部分 高氧诱导ROP模型SD大鼠视网膜组织miRNA表达谱的检测分析 | 第55-74页 |
| 3.1 前言 | 第55页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第55-62页 |
| 3.2.1 试验材料与主要仪器设备和试剂 | 第55-56页 |
| 3.2.2 试验方法 | 第56-62页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第62-73页 |
| 3.3.1 RNA的提取与质控结果 | 第62-63页 |
| 3.3.2 差异表达miRNA的初步分析 | 第63-66页 |
| 3.3.3 靶基因预测 | 第66-69页 |
| 3.3.4 GO富集分析 | 第69-70页 |
| 3.3.5 Pathway分析 | 第70-73页 |
| 3.4 本章小结 | 第73-74页 |
| 第四部分 差异表达miRNA的验证及其靶基因的检测分析 | 第74-105页 |
| 4.1 前言 | 第74-75页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第75-82页 |
| 4.2.1 实验材料及仪器设备与主要试剂 | 第75页 |
| 4.2.2 新生儿血液样本的收集及血浆RNA的提取 | 第75-76页 |
| 4.2.3 循环miRNA差异表达miRNA的定量PCR验证 | 第76-77页 |
| 4.2.4 差异表达miRNA靶基因的预测及功能富集分析 | 第77-79页 |
| 4.2.5 相关靶基因的表达验证与功能探索分析 | 第79-81页 |
| 4.2.6 循环miRNA与组织miRNA的差异表达分析及其在ROP新生儿样本中的验证 | 第81页 |
| 4.2.7 miR-351与VEGF,Ang-2的调控关系的研究 | 第81-82页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第82-103页 |
| 4.3.1 血浆循环miRNA差异表达情况的定量PCR验证分析 | 第82-84页 |
| 4.3.2 差异表达miRNA的靶基因预测及GO、KEGG分析 | 第84-89页 |
| 4.3.3 血管内皮生长因子与ROP模型鼠特异miRNA之的关系 | 第89-94页 |
| 4.3.4 γ-氨基丁酸与高氧诱导模型鼠特异的循环miRNA之间的关系 | 第94-96页 |
| 4.3.5 差异表达miRNA在ROP新生儿样本中的验证 | 第96-98页 |
| 4.3.6 猴脉络膜-视网膜(内皮)细胞(RF/6A)中miR-351与VEGF,Ang-2的调控关系研究结果 | 第98-103页 |
| 4.4 本章讨论与小结 | 第103-105页 |
| 第五部分 总结展望 | 第105-111页 |
| 5.1 全文讨论总结 | 第105-109页 |
| 5.1.1 模型鼠构建的评价 | 第105页 |
| 5.1.2 差异表达miRNA的筛选 | 第105-106页 |
| 5.1.3 生物信息分析 | 第106-107页 |
| 5.1.4 个别miRNA与靶基因的验证与分析 | 第107-108页 |
| 5.1.5 视网膜组织差异表达miRNA的检测与分析 | 第108页 |
| 5.1.6 差异表达miRNA在早产儿病例中的初步验证 | 第108-109页 |
| 5.2 全文结论 | 第109页 |
| 5.3 存在的问题与研究展望 | 第109-111页 |
| 参考文献 | 第111-120页 |
| 致谢 | 第120-122页 |
| 作者简介 | 第122-123页 |
