| 缩略词 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第1章 前言 | 第12-16页 |
| 1.1 糖尿病脑损害与海马内质网应激及突触形成障碍 | 第12-13页 |
| 1.2 硫化氢的神经保护作用 | 第13页 |
| 1.3 脑源性神经营养因子 | 第13-14页 |
| 1.5 本研究的科学问题和研究思路 | 第14-16页 |
| 第2章 材料与方法 | 第16-22页 |
| 2.1 主要试剂和主要仪器 | 第16-17页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第16-17页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第17页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第17页 |
| 2.2 试剂和药品的配制 | 第17-19页 |
| 2.2.1 柠檬酸缓冲溶液的配制 | 第17-18页 |
| 2.2.2 STZ溶液的配制 | 第18页 |
| 2.2.3 NaHS溶液的配制 | 第18页 |
| 2.2.4 PBS的配制 | 第18页 |
| 2.2.5 AP溶液配制 | 第18页 |
| 2.2.6 TBST溶液的配制 | 第18页 |
| 2.2.7 Tris·Cl (pH 6.8) 溶液的配制 | 第18页 |
| 2.2.8 Tris·Cl (pH 8.8) 溶液的配制 | 第18页 |
| 2.2.9 SDS溶液的配制 | 第18-19页 |
| 2.2.10 电泳缓冲液的配制 | 第19页 |
| 2.2.11 转移缓冲液配制 | 第19页 |
| 2.3 实验方法 | 第19-20页 |
| 2.3.1 糖尿病大鼠造模及给药方法 | 第19页 |
| 2.3.2 大鼠海马组织匀浆及样品的制备 | 第19-20页 |
| 2.3.3 Western blotting方法检测大鼠海马内GRP78，CHOP， cleavedcaspase-12 ，BDNF，TrkB, SYN1蛋白的表达 | 第20页 |
| 2.4 统计分析 | 第20-22页 |
| 第3章 结果 | 第22-28页 |
| 3.1 H_2S抑制糖尿病大鼠海马GRP78的表达 | 第22页 |
| 3.2.H_2S抑制糖尿病大鼠海马CHOP的表达 | 第22-23页 |
| 3.3.H_2S抑制糖尿病大鼠海马CLEAVED CASPASE-12的表达 | 第23-24页 |
| 3.4 H_2S逆转糖尿病大鼠海马突触蛋白SYN1的表达下降 | 第24-25页 |
| 3.5 H_2S上调糖尿病大鼠海马BDNF/TRKB通路 | 第25-28页 |
| 第4章 讨论 | 第28-32页 |
| 4.1 糖尿病导致大鼠海马内质网应激及突触障碍 | 第28-29页 |
| 4.2 硫化氢拮抗糖尿病大鼠海马内质网应激及突触障碍 | 第29-30页 |
| 4.3 BDNF/TRKB通路涉及到硫化氢拮抗糖尿病大鼠海马内质网应激及突触生成障碍 | 第30-32页 |
| 第5章 结论 | 第32-34页 |
| 参考文献 | 第34-40页 |
| 糖尿病性认知功能障碍的机制及其防治(综述) | 第40-44页 |
| 参考文献 | 第42-44页 |
| 硕士期间发表论文 | 第44-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
