| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第16-38页 |
| 1.1 侧柏叶简介及研究进展 | 第16-21页 |
| 1.1.1 侧柏简介 | 第16页 |
| 1.1.2 侧柏叶及柏子仁简介 | 第16-18页 |
| 1.1.3 侧柏叶相关论文研究进展 | 第18-19页 |
| 1.1.4 侧柏叶相关专利研究进展 | 第19-21页 |
| 1.2 天然植物黄酮提取纯化工艺研究进展 | 第21-26页 |
| 1.3 天然活性多糖生物活性研究进展 | 第26-34页 |
| 1.3.1 免疫活性 | 第26-28页 |
| 1.3.2 抗肿瘤活性 | 第28-32页 |
| 1.3.3 抗氧化活性 | 第32页 |
| 1.3.4 抗炎活性 | 第32-33页 |
| 1.3.5 抗病毒活性 | 第33-34页 |
| 1.4 黄酮和多糖相关保健食品简介 | 第34-37页 |
| 1.4.1 功效成分为黄酮的保健食品简介 | 第34-36页 |
| 1.4.2 功效成分为多糖的保健食品简介 | 第36-37页 |
| 1.5 本论文的主要研究内容 | 第37-38页 |
| 第二章 侧柏叶黄酮分离纯化、结构表征及活性评价 | 第38-64页 |
| 引言 | 第38-39页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第39-41页 |
| 2.2 主要仪器与设备 | 第41-42页 |
| 2.3 实验方法 | 第42-46页 |
| 2.3.1 侧柏叶黄酮的提取 | 第42页 |
| 2.3.2 总黄酮含量的测定 | 第42页 |
| 2.3.3 大孔吸附树脂的预处理 | 第42页 |
| 2.3.4 树脂型号的筛选 | 第42-43页 |
| 2.3.5 静态吸附和解吸试验 | 第43页 |
| 2.3.6 静态吸附等温线试验 | 第43-44页 |
| 2.3.7 大孔吸附树脂柱层析纯化侧柏叶黄酮 | 第44页 |
| 2.3.8 紫外可见全波长扫描 | 第44页 |
| 2.3.9 红外光谱分析 | 第44页 |
| 2.3.10 液相色谱-质谱联用分析 | 第44-45页 |
| 2.3.11 侧柏叶黄酮POF热稳定性分析 | 第45页 |
| 2.3.12 侧柏叶黄酮POF的抗炎活性 | 第45页 |
| 2.3.12.1 细胞培养 | 第45页 |
| 2.3.12.2 细胞毒性试验 | 第45页 |
| 2.3.12.3 细胞因子NO、TNF-α 和IL-6 含量的测定 | 第45页 |
| 2.3.13 统计分析 | 第45-46页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第46-63页 |
| 2.4.1 总黄酮含量的测定 | 第46-47页 |
| 2.4.2 大孔吸附树脂型号的筛选 | 第47-48页 |
| 2.4.3 AB-8 树脂吸附侧柏叶黄酮动力学曲线 | 第48-49页 |
| 2.4.4 AB-8 树脂解吸侧柏叶黄酮动力学曲线 | 第49-50页 |
| 2.4.5 AB-8 树脂吸附等温线 | 第50页 |
| 2.4.6 AB-8 树脂柱层析动态洗脱曲线 | 第50-51页 |
| 2.4.7 侧柏叶黄酮POF紫外-可见全波长扫描 | 第51-52页 |
| 2.4.8 侧柏叶黄酮POF红外光谱分析 | 第52-53页 |
| 2.4.9 侧柏叶黄酮POF液相色谱-质谱联用分析 | 第53-56页 |
| 2.4.10 侧柏叶黄酮POF热稳定性分析 | 第56-57页 |
| 2.4.11 侧柏叶黄酮POF的抗炎活性 | 第57-63页 |
| 2.4.11.1 侧柏叶黄酮POF对RAW 264.7 细胞存活率的影响 | 第57-59页 |
| 2.4.11.2 侧柏叶黄酮POF对RAW 264.7 细胞分泌NO的影响 | 第59-60页 |
| 2.4.11.3 侧柏叶黄酮POF对RAW 264.7 细胞分泌TNF-α 的影响 | 第60-61页 |
| 2.4.11.4 侧柏叶黄酮POF对RAW 264.7 细胞分泌IL-6 的影响 | 第61-63页 |
| 2.5 本章小结 | 第63-64页 |
| 第三章 侧柏叶多糖POP1分离纯化、结构表征及活性评价 | 第64-97页 |
| 引言 | 第64-65页 |
| 3.1 实验材料与试剂 | 第65-67页 |
| 3.2 主要仪器与设备 | 第67-68页 |
| 3.3 实验方法 | 第68-74页 |
| 3.3.1 侧柏叶多糖的提取与纯化 | 第68-69页 |
| 3.3.2 阴离子交换柱层析纯化侧柏叶多糖 | 第69页 |
| 3.3.3 葡聚糖凝胶柱层析纯化侧柏叶多糖 | 第69页 |
| 3.3.4 分子量的测定 | 第69页 |
| 3.3.5 高碘酸氧化分析 | 第69-70页 |
| 3.3.6 单糖组成分析 | 第70-71页 |
| 3.3.7 甲基化分析 | 第71页 |
| 3.3.8 红外光谱分析 | 第71页 |
| 3.3.9 核磁共振分析 | 第71页 |
| 3.3.10 热稳定性分析 | 第71-72页 |
| 3.3.11 侧柏叶多糖POP1的免疫活性 | 第72-73页 |
| 3.3.11.1 细胞培养 | 第72页 |
| 3.3.11.2 细胞毒性试验 | 第72页 |
| 3.3.11.3 侧柏叶多糖POP1对NO、TNF-α、IL-6 和IL-12 分泌量的影响 | 第72页 |
| 3.3.11.4 侧柏叶多糖POP1对IL-6、TNF-α 和i NOS m RNA表达的影响 | 第72-73页 |
| 3.3.12 侧柏叶多糖POP1的抗乙肝病毒活性 | 第73-74页 |
| 3.3.12.1 细胞培养 | 第73页 |
| 3.3.12.2 细胞毒性试验 | 第73页 |
| 3.3.12.3 侧柏叶多糖POP1对HBV分泌HBs Ag和HBe Ag的影响 | 第73-74页 |
| 3.3.12.4 侧柏叶多糖POP1对HBV DNA复制的影响 | 第74页 |
| 3.3.13 统计分析 | 第74页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第74-96页 |
| 3.4.1 侧柏叶多糖的提取与纯化 | 第74页 |
| 3.4.2 侧柏叶多糖离子交换柱层析 | 第74-75页 |
| 3.4.3 侧柏叶多糖凝胶过滤柱层析 | 第75-76页 |
| 3.4.5 侧柏叶多糖POP1分子量的测定 | 第76-77页 |
| 3.4.6 侧柏叶多糖POP1单糖组成分析 | 第77-78页 |
| 3.4.7 侧柏叶多糖POP1高碘酸氧化分析 | 第78页 |
| 3.4.8 侧柏叶多糖POP1甲基化分析 | 第78-79页 |
| 3.4.9 侧柏叶多糖POP1红外光谱分析 | 第79-80页 |
| 3.4.10 侧柏叶多糖POP1核磁共振分析 | 第80-83页 |
| 3.4.11 侧柏叶多糖POP1热稳定性分析 | 第83-84页 |
| 3.4.12 侧柏叶多糖POP1的免疫活性 | 第84-91页 |
| 3.4.12.1 侧柏叶多糖POP1对RAW 264.7 细胞存活率的影响 | 第84-85页 |
| 3.4.12.2 侧柏叶多糖POP1对RAW 264.7 细胞分泌NO的影响 | 第85-86页 |
| 3.4.12.3 侧柏叶多糖POP1对RAW 264.7 细胞分泌TNF-α 的影响 | 第86-87页 |
| 3.4.12.4 侧柏叶多糖POP1对RAW 264.7 细胞分泌IL-6 的影响 | 第87-88页 |
| 3.4.12.5 侧柏叶多糖POP1对RAW 264.7 细胞分泌IL-12 的影响 | 第88-89页 |
| 3.4.12.6 侧柏叶多糖POP1对RAW 264.7 细胞因子m RN A表达的影响 | 第89-91页 |
| 3.4.13 侧柏叶多糖POP1的抗乙肝病毒活性 | 第91-96页 |
| 3.4.13.1 侧柏叶多糖POP1对Hep G2.2.15 细胞存活率的影响 | 第92页 |
| 3.4.13.2 侧柏叶多糖POP1对乙肝病毒分泌HBs Ag的影响 | 第92-93页 |
| 3.4.13.3 侧柏叶多糖POP1对乙肝病毒分泌HBe Ag的影响 | 第93-95页 |
| 3.4.13.4 侧柏叶多糖POP1对乙肝病毒DNA复制的影响 | 第95-96页 |
| 3.5 本章小结 | 第96-97页 |
| 第四章 侧柏叶多糖POP2的分离纯化、结构表征及活性评价 | 第97-129页 |
| 引言 | 第97-98页 |
| 4.1 实验材料与试剂 | 第98页 |
| 4.2 主要仪器与设备 | 第98页 |
| 4.3 实验方法 | 第98-102页 |
| 4.3.1 侧柏叶多糖的提取与纯化 | 第98-99页 |
| 4.3.2 阴离子交换柱层析纯化侧柏叶多糖 | 第99页 |
| 4.3.3 葡聚糖凝胶柱层析纯化侧柏叶多糖 | 第99页 |
| 4.3.4 分子量的测定 | 第99页 |
| 4.3.5 单糖组成分析 | 第99页 |
| 4.3.6 甲基化分析 | 第99页 |
| 4.3.7 红外光谱分析 | 第99页 |
| 4.3.8 核磁共振分析 | 第99页 |
| 4.3.9 侧柏叶多糖POP2对巨噬细胞极化的调节作用 | 第99-102页 |
| 4.3.9.1 细胞培养 | 第99页 |
| 4.3.9.2 细胞毒性试验 | 第99-100页 |
| 4.3.9.3 巨噬细胞M1和M2亚型极化模型的建立 | 第100-102页 |
| 4.3.9.4 POP2对LPS诱导的M1亚型巨噬细胞分泌细胞因子的影响 | 第102页 |
| 4.3.9.5 POP2对IL-4 诱导的M2亚型巨噬细胞分泌细胞因子的影响 | 第102页 |
| 4.3.10 统计分析 | 第102页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第102-128页 |
| 4.4.1 侧柏叶多糖的提取与纯化 | 第102-103页 |
| 4.4.2 侧柏叶多糖离子交换柱层析 | 第103页 |
| 4.4.3 侧柏叶多糖凝胶过滤柱层析 | 第103-104页 |
| 4.4.4 侧柏叶多糖POP2分子量的测定 | 第104-105页 |
| 4.4.5 侧柏叶多糖POP2单糖组成分析 | 第105-106页 |
| 4.4.6 侧柏叶多糖POP2甲基化分析 | 第106-107页 |
| 4.4.7 侧柏叶多糖POP2红外光谱分析 | 第107-108页 |
| 4.4.8 侧柏叶多糖POP2核磁共振分析 | 第108-111页 |
| 4.4.9 侧柏叶多糖POP2对巨噬细胞极化的调节作用 | 第111-128页 |
| 4.4.9.1 侧柏叶多糖POP2对RAW 264.7 细胞存活率的影响 | 第111-112页 |
| 4.4.9.2 巨噬细胞M1和M2亚型极化模型的建立 | 第112-121页 |
| 4.4.9.3 侧柏叶多糖POP2对M1极化巨噬细胞分泌细胞因子的影响 | 第121-124页 |
| 4.4.9.4 侧柏叶多糖POP2对M2极化巨噬细胞分泌细胞因子的影响 | 第124-128页 |
| 4.5 本章小结 | 第128-129页 |
| 结论与展望 | 第129-132页 |
| 一、结论 | 第129-130页 |
| 二、本论文的创新点 | 第130-131页 |
| 三、展望 | 第131-132页 |
| 参考文献 | 第132-149页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第149-150页 |
| 致谢 | 第150-152页 |
| 答辩委员会对论文的评定意见 | 第152页 |
